1. Przetwarzanie organoidów w histologii: metoda Agarozy Spin Down
UWAGA: Ten protokół jest adaptacją poprzedniej publikacji Vlachogiannisa i wsp. Dodaliśmy krok polegający na osadzaniu agarozy, aby pomyślnie osadzić wszystkie populacje organoidów.
- Usuń istniejące media ze studni. Uważaj, aby nie zasysać kopuł membrany podstawnej.
- Dodać równą (równą objętości pożywki usuniętej z kroku 1) objętość roztworu do odzyskiwania komórek i inkubować przez 60 minut w temperaturze 4 °C.
- Usuń kopułę membrany podstawnej za pomocą pipety i zmiażdż kopułę membrany podstawnej za pomocą końcówki pipety. Zebrać zdysocjowaną kopułę i roztwór do odzyskiwania komórek w probówce o pojemności 1,5 ml.
- Wirować w temperaturze 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 min.
- Usunąć supernatant (roztwór do odzyskiwania komórek). Zachować wszystkie supernatanty w oddzielnych probówkach do końca, kiedy obecność organoidów zostanie potwierdzona w końcowym etapie granulowania.
- Dodać żądaną objętość (Tabela 1) zimnego PBS i delikatnie pipetować w górę i w dół, aby mechanicznie zakłócić osad.
- Wirować w temperaturze 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 min.
- Usunąć supernatant (PBS).
- Utrwalić osad w dopasowanej objętości (np. 500 μl na jeden osad z 24-dołkowej kultury na płytce, tabela 1) 4% PFA przez 60 minut w temperaturze pokojowej.
- Po utrwaleniu odwirować przy ciśnieniu 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 minut.
- Usunąć supernatant (PFA).
- Przemyć dopasowaną objętością (np. 500 μl dla jednego osadu z 24-dołkowej hodowli na płytce, tabela 1) PBS i odwirować przy 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 minut.
- Przygotuj ciepłą agarozę (2% agarozy w PBS).
nuta: W tym przypadku granulki komórkowe do zamrożonych skrawków mogą być bezpośrednio zawieszone w 200 μl związku OCT.
- Zawiesić osad komórkowy w 200 μl agarozy (2% w PBS).
- Natychmiast po dodaniu agarozy delikatnie oderwać osad komórkowy od ścianki probówki o pojemności 1,5 ml za pomocą igły 25 G dołączonej do strzykawki o pojemności 1 ml. Jak pokazano na rysunku 1, jeśli osad komórkowy nie jest fizycznie odłączony od ścianki probówki o pojemności 1,5 ml, istnieje ryzyko utraty całości lub części osadu komórkowego podczas procesu zatapiania agarozy.
- Poczekaj, aż 2% agaroza w PBS całkowicie się zestali.
- Odłączyć zestalony blok agarozy od probówki o pojemności 1,5 ml za pomocą igły 25 G dołączonej do strzykawki o pojemności 1 ml.
- Przenieść odłączony blok agarozy zawierający osad komórkowy do nowej probówki o pojemności 1,5 ml.
- Napełnij probówkę 70% EtOH i kontynuuj, stosując konwencjonalny protokół odwadniania tkanek i zatapiania parafiny.
Tabela 1: Gęstość wysiewu, objętość membrany podstawnej i objętość podłoża potrzebna dla jednej kopuły
szt.
szt.
szt.
| Talerz kulturowy | Gęstość wysiewu (komórki) | Objętość membrany podstawnej (μl) | Średni (μL) |
| 48 studnia | 25 000-50 000 | 20 | Z kolei 250 |
| 24 studnia | 50 000-250 000 | Rozdział 40 | 500 |
| 6 studni | 50 000-250 000 | Rozdział 40 | 2 000 |