Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Test wirowania agarozy: technika osadzania organoidów do analizy histologicznej

5.5K wyświetleń

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Lee, S. et al. Tworzenie i analiza trójwymiarowych (3D) organoidów pochodzących z próbek przerzutów do kości raka prostaty u pacjentów i ich ksenoprzeszczepów. J. Vis. Exp. (2020)

W tym filmie przeprowadzamy test spin-down, aby osadzić organoidy 3D raka prostaty w agarozie. Te osadzone organoidy mogą być wykorzystane do dalszej analizy histopatologicznej w celu zbadania wzrostu i rozwoju raka.

Protokół

1. Przetwarzanie organoidów w histologii: metoda Agarozy Spin Down

UWAGA: Ten protokół jest adaptacją poprzedniej publikacji Vlachogiannisa i wsp. Dodaliśmy krok polegający na osadzaniu agarozy, aby pomyślnie osadzić wszystkie populacje organoidów.

  1. Usuń istniejące media ze studni. Uważaj, aby nie zasysać kopuł membrany podstawnej.
  2. Dodać równą (równą objętości pożywki usuniętej z kroku 1) objętość roztworu do odzyskiwania komórek i inkubować przez 60 minut w temperaturze 4 °C.
  3. Usuń kopułę membrany podstawnej za pomocą pipety i zmiażdż kopułę membrany podstawnej za pomocą końcówki pipety. Zebrać zdysocjowaną kopułę i roztwór do odzyskiwania komórek w probówce o pojemności 1,5 ml.
  4. Wirować w temperaturze 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 min.
  5. Usunąć supernatant (roztwór do odzyskiwania komórek). Zachować wszystkie supernatanty w oddzielnych probówkach do końca, kiedy obecność organoidów zostanie potwierdzona w końcowym etapie granulowania.
  6. Dodać żądaną objętość (Tabela 1) zimnego PBS i delikatnie pipetować w górę i w dół, aby mechanicznie zakłócić osad.
  7. Wirować w temperaturze 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 min.
  8. Usunąć supernatant (PBS).
  9. Utrwalić osad w dopasowanej objętości (np. 500 μl na jeden osad z 24-dołkowej kultury na płytce, tabela 1) 4% PFA przez 60 minut w temperaturze pokojowej.
  10. Po utrwaleniu odwirować przy ciśnieniu 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 minut.
  11. Usunąć supernatant (PFA).
  12. Przemyć dopasowaną objętością (np. 500 μl dla jednego osadu z 24-dołkowej hodowli na płytce, tabela 1) PBS i odwirować przy 300 x g i temperaturze 4 °C przez 5 minut.
  13. Przygotuj ciepłą agarozę (2% agarozy w PBS).
    nuta: W tym przypadku granulki komórkowe do zamrożonych skrawków mogą być bezpośrednio zawieszone w 200 μl związku OCT.
  14. Zawiesić osad komórkowy w 200 μl agarozy (2% w PBS).
    1. Natychmiast po dodaniu agarozy delikatnie oderwać osad komórkowy od ścianki probówki o pojemności 1,5 ml za pomocą igły 25 G dołączonej do strzykawki o pojemności 1 ml. Jak pokazano na rysunku 1, jeśli osad komórkowy nie jest fizycznie odłączony od ścianki probówki o pojemności 1,5 ml, istnieje ryzyko utraty całości lub części osadu komórkowego podczas procesu zatapiania agarozy.
  15. Poczekaj, aż 2% agaroza w PBS całkowicie się zestali.
  16. Odłączyć zestalony blok agarozy od probówki o pojemności 1,5 ml za pomocą igły 25 G dołączonej do strzykawki o pojemności 1 ml.
  17. Przenieść odłączony blok agarozy zawierający osad komórkowy do nowej probówki o pojemności 1,5 ml.
  18. Napełnij probówkę 70% EtOH i kontynuuj, stosując konwencjonalny protokół odwadniania tkanek i zatapiania parafiny.

Tabela 1: Gęstość wysiewu, objętość membrany podstawnej i objętość podłoża potrzebna dla jednej kopuły

szt. szt. szt.
Talerz kulturowyGęstość wysiewu (komórki)Objętość membrany podstawnej (μl)Średni (μL)
48 studnia25 000-50 00020Z kolei 250
24 studnia50 000-250 000Rozdział 40500
6 studni50 000-250 000Rozdział 402 000

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1: Kluczowy krok do udanego osadzania agarozy. Proces polegający na odłączaniu osadu komórkowego od ścianki probówki o pojemności 1,5 ml.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1 ml PipettmanaGilsonF123602
Strzykawka 1 mlStrzykawka BD329654
Probówka 1,5 mlProdukty Spectrum Lab941-11326-ATP083
Igła 25GIgła BD PrecisionGlide305122
4% paraformaldehydu (PFA)Alfa AesarZobacz materiał J61899
70% etanol (EtOH)Firma VWRBDH1164-4LP
AgarozyLonza50000
Płytka do hodowli komórkowych - 24 dołkiCostar3524
Płytka do hodowli komórkowych - 48 dołkówCostar3548
Płytka do hodowli komórkowych - 6 dołkówCostarNumer katalogowy: 3516
Roztwór do dysocjacji komórek, AccumaxInnowacyjne technologie komórkowe, Inc.Zobacz materiał AM105
Rozwiązanie do odzyskiwania komórekCorning354253
Skrobak do komórekSarstedt83,18
dPBS (pałeczka dPBSCorning/Cellgro21-031-CV
Końcówki do pipet o pojemności 1 ml (niebieskie końcówki)Fisherbrand Redi-Tip21-197-85
Mała wirówka stołowaThermoFisher Naukowy75002426
Związek OCTTka tkankowaNumer katalogowy: 4583
Kąpiel wodnaFisher Sc2320
szt. TGL SZT. powiedział: pkt. szt.

Tagi

Zatapianie organoid w3D hodowla organoid worganoidy raka prostatymedium do odzyskiwania kom rekfiksacja paraformaldehydemzestalanie agarozyodwadnianie tkanekzatapianie w parafinie