$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Funkcjonalna charakterystyka nabytej odporności na docetaksel za pomocą testu tworzenia kolonii
UWAGA: W tym protokole, chemooporność została oceniona za pomocą testów tworzenia kolonii. Alternatywne metody stosowane do oceny żywotności komórek (tj. testy MTS) mogą być stosowane w oparciu o preferencje badaczy.
- Umieść 2,000 komórek (DU145 lub 22Rv1, zarówno rodzicielskich, jak i opornych na docetaksel) na dołku na płytkach 6-dołkowych, używając 2 ml pożywki na studzienkę.
- Po 24 godzinach dodać zwiększające się stężenia docetakselu (komórki rodzicielskie: 0,25, 0,5, 1, 2,5 i 5 nM; Ogniwa DR: 50, 125, 250, 500 i 1 000 nM). Dla obu linii komórkowych DU145 i 22Rv1. Dodać DMSO tylko do jednego dołka jako kontrolnego o tej samej objętości, co dla najwyższej dawki docetakselu.
- Po 72 godzinach odessać pożywkę zawierającą lek i dodać świeżą pożywkę wolną od docetakselu.
- Inkubuj płytki przez 1-2 tygodnie, aż kolonie będą widoczne pod mikroskopem.
- Aby zabarwić kolonie, umyj je delikatnie 2-3 ml PBS i inkubuj z 2-3 ml roztworu fioletu krystalicznego (0,1% w/v w 10% formalinie) przez 20 minut w kapturze do hodowli tkankowej lub dygestorium.
- Usunąć roztwór barwiący, umyć płytki 2-3 mlH2O, usunąćH2Oi wysuszyć płytki na powietrzu.
- Przeanalizuj wynik, wizualizując dołki i ręcznie licząc kolonie za pomocą markera (aby uniknąć dwukrotnego liczenia tych samych kolonii) i przedstaw procent żywotności komórek na wykresie. Wykonaj cyfrowe zdjęcia płyt w celu przedstawienia figury (Rysunek 1A).