Artykuł metodologiczny

Generowanie modelu raka nerkowokomórkowego: protokół rozwoju ortotopowego mysiego modelu RCC poprzez donerkową implantację komórek rakowych

30 kwietnia 2023

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Murphy, K. A. et al. Syngenetyczny mysi model przerzutowego raka nerkowokomórkowego do ilościowej i podłużnej oceny terapii przedklinicznych. J. Vis. Exp. (2017)

W tym filmie rozwijamy ortotopowy mysi model raka nerkowokomórkowego. Model ten skutkuje powtarzalnymi guzami pierwotnymi w wstrzykniętej nerce i przerzutami w płucach, co pozwala na ocenę postępu choroby i leczenia.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Implantacja komórek

Aby wszczepić komórki Renca donerkowo, przygotuj komórki Renca do jednokomórkowego zawiesiny o stężeniu 2 x 106 komórek/ml w Zrównoważonym Roztworze Soli Hanka (HBSS).

  1. Usunąć przylegające komórki Renca z kolby do hodowli tkankowej, używając 0,25% trypsyny w HBSS. Po ~5 minutach dodaj cały RPMI do kolby, aby zneutralizować trypsynę i przenieś komórki do probówki wirówkowej w celu przemycia. Odwirować komórki przy względnej sile odśrodkowej g 300 (rcf x g) przez 5 minut w temperaturze 25 °C.
  2. Zdekantować supernatant i ponownie zawiesić komórki w HBSS. Policz komórki za pomocą hemocytometru i dostosuj objętość za pomocą HBSS, aby uzyskać 2 x 106 komórek/ml.
  3. Pobrać komórki do strzykawki o pojemności 1 ml wyposażonej w igłę o rozmiarze 18, aby zapobiec naprężeniom ścinającym na komórkach. Zastąp igłę o rozmiarze 18 igłą o rozmiarze 28 przed wstrzyknięciem komórek nowotworowych. Wstrzyknięcie 0,1 ml dostarcza 2 x 105 komórek do nerki.

2. Przygotowanie obszaru operacyjnego

  1. Przygotuj sterylne pole operacyjne w komorze bezpieczeństwa biologicznego, umieszczając sterylną serwetę chirurgiczną na poduszce grzewczej. Zbierz wszystkie zapasy, w tym kleszcze, skalpel, nożyczki, krople do oczu, 5% środek antyseptyczny powidonowo-jodowy i sterylną gazę. Autoklaw wszystkie instrumenty przed użyciem.
  2. Wykonaj operację przy użyciu techniki aseptycznej końcówki. Ponownie sterylizuj narzędzia między zwierzętami za pomocą sterylizatora koralików. Nosić sterylne rękawiczki, fartuch laboratoryjny i maskę na twarz.

3. Przygotowanie zwierząt

  1. Znieczulenie myszy ketaminą/ksylazyną (odpowiednio 87,5 mg/kg i 12,5 mg/kg, i.p.) zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi. Określ głębokość znieczulenia, wykonując uszczypnięcie palca u nogi.
  2. Gdy zwierzę zostanie uznane za niereagujące, należy przygotować miejsce wstrzyknięcia (np. lewy bok) u myszy Balb/c, wyrywając (palcami) lub goląc (za pomocą maszynki do strzyżenia) sierść.
  3. Przenieś myszy z obszaru przygotowania do operacji (np. klatki mieszkaniowej) do obszaru operacyjnego i nałóż maść weterynaryjną na oczy, aby zapobiec wysuszeniu. Obficie przetrzyj przygotowane miejsce nacięcia 5% środkiem antyseptycznym powidonowo-jodowym.
  4. Wstrzyknąć chlorowodorek bupiwakainy (0,1 ml roztworu o stężeniu 2,5 mg/ml s.c.) w miejsce, w którym zostanie wykonane nacięcie, jako przedoperacyjne działanie przeciwbólowe.
  5. Wykonaj pojedyncze nacięcie (~1,0 do 1,5 cm) na lewym boku zwierzęcia za pomocą sterylnego skalpela lub nożyczek, ostrożnie, aby nie przebić otrzewnej. Oddziel skórę właściwą od otrzewnej sterylnymi nożyczkami. Przetrzyj miejsce nacięcia sterylną gazą bawełnianą, aby usunąć krew.
  6. Trzymaj mysz obiema rękami, lewą ręką trzymaj głowę, a prawą ręką podpieraj bok.
  7. Zidentyfikuj śledzionę przez otrzewną i jednym palcem prawej ręki obmacuj mysz od spodu; nerka powinna być teraz widoczna przez otrzewną. Trzymaj zwierzę mocno, aby zapewnić napięcie w poprzek otrzewnej i nerek.
  8. Poproś drugą osobę o wstrzyknięcie komórek nowotworowych (przygotowanych w sekcji 1.2) przez nienaruszoną otrzewną do środka nerki za pomocą strzykawki o pojemności 1 ml wyposażonej w igłę o rozmiarze 28. Powoli dostarczaj 0,1 ml (2 x 105) komórek. Po wstrzyknięciu komórek należy przytrzymać igłę na miejscu przez 5–10 sekund, aby zmniejszyć cofanie się komórek. Ważne jest, aby pamiętać o konieczności zachowania szczególnej ostrożności podczas tego etapu, ponieważ osoba wstrzykująca komórki zbliży igłę do palców osoby trzymającej mysz.
  9. Wyjąć igłę i zamknąć nacięcie cienką warstwą kleju tkankowego z cyjanoakrylanu.
  10. Umieść zwierzę z powrotem w czystej klatce ze sterylnym ręcznikiem papierowym. Pozwól zwierzętom dojść do siebie na poduszce grzewczej. Nie pozostawiaj zwierząt bez opieki w okresie rekonwalescencji. Nie należy przywracać zwierząt do standardowych warunków w pomieszczeniach, dopóki nie osiągną pozycji pionowej i mostkowej. Postępuj zgodnie z wytycznymi instytucjonalnymi we wszystkich procedurach z wykorzystaniem zwierząt laboratoryjnych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Maść okulistyczna ze sztucznymi łzamiAkorn powiedział:NDC 17478-162-35
Klej do tkanek Vetbond 3 mlnCBGBIW011019
Roztwór betadyny (powidonjodyna, 5%) NDC Produkty Purdue, L.P.Nr kat. 67618-155-32
0,25% Marcaine (Bupivavaine HCl do wstrzykiwań)Hospira0409-1587-50
Poduszka grzewcza Sunbeam
Strzykawki BD309659
gaza przedsięwzięcie908291
KetaminaPhoenix Pharmaceuticals NDCNr kat. 57319-609-02
Ksylazyna Akorn NDCNr kat. 59399-111
Zrównoważone sole Hanka Sigma-AldrichZobacz materiał H2387
nożyczki
Kleszcze
Renca (Renca)Kontroler ATCC (Kontroler TCRL-2947

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Orthotopic RCC ModelImmunodeficient MouseRenca CellsCell Suspension InjectionTissue AdhesiveTumor Growth MonitoringMetastatic Lung TumorsCell Preparation Protocol

Powiązane artykuły