Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.
1. Wstępne kondycjonowanie hipoksyjne ludzkich NSC (Rysunek 1A)
- NSC z kulturą płytkową w kolbach hodowlanych T75 aż do osiągnięcia 90% zbieżności.
- Umieścić kolby do hodowli komórkowych w wilgotnej komorze / inkubatorze CO2 z utrzymywanym poziomem 1%O2 przez 24 godziny, za pośrednictwem dopływu gazu N2 kontrolowanego przez automatyczny wbudowany przepływomierz. Komórki te są określane jako HNSC. Kontrolne NSC Nsą generowane jako:
- Utrzymuj ludzkie NSC (klony HB1.F3.CD) w pożywce DMEM z 10% FBS i 1% penicyliny-streptomycyny w wilgotnym inkubatorze o temperaturze 37 °C w 95% powietrza w pomieszczeniu i 5% CO2 .
2. Obciążenie ludzkich NSC wirusem onkolitycznym (Rysunek 1B-1H)
- Zakażone NNSC, HNSC 50 warunkowymi cząstkami wirusa adenowirusa replikacyjnego (CRAd)-S-pk7 na komórkę.
- Po 2 godzinach inkubacji w temperaturze pokojowej z okresowym stukaniem, umyć komórki trzykrotnie pożywką w celu usunięcia niezwiązanych cząstek wirusa i zawiesić komórki w sterylnym roztworze soli fizjologicznej do wstrzykiwań.
ostrożność: Przeprowadzanie wszystkich procedur hodowli komórkowych in vitro związanych z wirusem w obiektach o odpowiednim oznaczeniu poziomu bezpieczeństwa biologicznego, takiego jak BSL2. Badacze zajmujący się wirusem onkolitycznym muszą nosić odpowiednie środki ochrony osobistej zgodnie z wytycznymi instytucji zajmujących się zwierzętami.
3. Donosowe podawanie terapeutycznych NSC (Rysunki 1D i Ryc. 2D)
- Hodowla i zbieranie NSC (NNSC, HNSC).
- Znieczulenie myszy poprzez wstrzyknięcie dożylnie mieszaniny ketaminy i ksylazyny zgodnie z procedurą:
- Znieczulić zwierzę na podstawie masy ciała przy użyciu zatwierdzonych odczynników, tj. poprzez dootrzewnowe wstrzyknięcie mieszaniny ketaminy (50–100 mg/kg; zatwierdzony zakres dawek należy sprawdzić w instytucjonalnym IACUC) i ksylazyny (5–10 mg/kg; zatwierdzony zakres dawek należy sprawdzić w instytucjonalnym IACUC) w 200–250 μl sterylnego roztworu soli fizjologicznej, lub za pomocą 4-5% znieczulenia izofluranem za pomocą urządzenia wziewnego.
- Umieść myszy na czystej zasłonie przodem do góry, z poduszką grzewczą pod spodem, aby utrzymać temperaturę ciała. Wyreguluj wyściełaną poduszkę wykonaną ze zwiniętych ręczników papierowych za pomocą taśm, aby zapewnić pionowy kąt nozdrzy po umieszczeniu pod głową myszy.
- Za pomocą mikropipety dozować 2 μl zawiesiny NSC do każdego nozdrza myszy. Potwierdź wizualnie aspirację kropli przed przejściem do następnej myszy. Całkowita liczba dostarczonych komórek może być określona przez użytkownika; zużyć 62 500–125 000 komórek/μl, tak aby 0,5–1 milion komórek mogło zostać dostarczonych w dawkach 4 x 2 μl.
- Użyj timera, aby zapewnić 5-minutowe odstępy między każdym podaniem zawiesiny komórek, do 4 razy.
- Umożliwić zwierzętom odzyskanie mobilności w komorze rekonwalescencyjnej, przy zachowaniu pozycji leżącej na plecach przez cały czas.