Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Chirurgiczne wszczepienie telemetrycznego systemu monitorowania temperatury w modelu mysim: zabieg chirurgiczny polegający na wszczepieniu urządzenia telemetrycznego temperatury do pomiaru temperatury ciała myszy

3.9K wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: King, M. A. et al. Przedkliniczny model wysiłkowego udaru cieplnego u myszy. J. Vis. Exp. (2021)

W tym filmie opisujemy zabieg chirurgiczny polegający na wszczepieniu urządzenia telemetrycznego temperatury do modelu mysiego w celu ciągłego pomiaru temperatury ciała.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE

1. Chirurgiczne wszczepienie telemetrycznego systemu monitorowania temperatury

  1. Po przybyciu od sprzedawcy pozwól zwierzętom odpocząć w wiwarium przez co najmniej 1 tydzień przed zabiegiem, aby zminimalizować stres związany z transportem.
  2. Myszy są trzymane w grupie (maksymalnie 5 sztuk na klatkę zgodnie z lokalnymi wytycznymi IACUC) do dnia operacji wszczepienia urządzenia telemetrycznego do temperatury. Umieść je w standardowych klatkach o wymiarach 7,25 cala (szer.) x 11,75 cala (dł.) x 5 cali (wys.) zawierających ściółkę z kolb kukurydzy. Utrzymuj cykl światła w cyklu świetlnym 12 x 12 (wł.: 7 rano; wył.: 7 wieczorem). Utrzymuj temperaturę obudowy na poziomie 20–22 °C, a wilgotność względną (wilgotność względną) na poziomie 30–60%. Zapewnij standardową dietę i wodę ad libitum do czasu protokołu EHS.
    nuta: Uzasadnieniem dla indywidualnego trzymania jest uniknięcie częstych urazów podczas walki u samców myszy C57bl/6J i zapewnienie dużej ilości okazji do spontanicznego biegania po kole dla każdej myszy.
  3. W celu umieszczenia urządzeń telemetrycznych należy znieczulić mysz izofluranem (4%, 0,4–0,6 l/min przepływu O2) w komorze indukcyjnej. Następnie umieść mysz w ciągłym znieczuleniu za pomocą stożka nosowego (1,5%, 0,6 l/min).
  4. Używaj lubrykantu do oczu, takiego jak maść weterynaryjna, aby chronić oczy zwierzęcia przed uszkodzeniem lub obrażeniami podczas operacji.
  5. Aby przygotować miejsce operacji, ogol dolną część brzucha małymi maszynkami do strzyżenia włosów dla zwierząt lub użyj dostępnego w handlu środka do usuwania włosów. W tym czasie należy podać pierwszą dawkę buprenorfiny podskórnie (0,1 mg/kg).
  6. Wyszoruj obszar trzema płukaniami jodonu powidonu (lub podobnym peelingiem bakteriobójczym), a następnie spłucz 70% alkoholem izopropylowym (lub sterylną solą fizjologiczną, w zależności od lokalnych wymagań weterynaryjnych). Następnie przenieś mysz do obszaru operacyjnego.
  7. Użyj samoprzylepnej serwety, aby odizolować miejsce operacji na myszy. Za pomocą sterylnych narzędzi i techniki aseptycznej wykonaj nacięcie ~1 cm na linii środkowej wzdłuż linea alba, około 0,5 cm od brzegu żebrowego. Następnie oddziel skórę od warstwy mięśniowej i wykonaj nieco mniejsze nacięcie na kresie białej, uważając, aby nie uszkodzić jelit ani narządów wewnętrznych.
  8. Gdy warstwa mięśniowa jest otwarta, umieść sterylny telemetr (miniaturowe bezbateryjne urządzenie radiotelemetryczne wielokrotnego użytku; 16,5 x 6,5 mm) w jamie wewnątrzotrzewnowej przed tętnicami i żyłami ogonowymi oraz na grzbiecie narządów trawiennych, aby umożliwić mu swobodne unoszenie się.
    nuta: Wszystkie telemetry są czyszczone wodą z mydłem, dokładnie płukane i sterylizowane gazem tlenkiem etylenu między użyciami. Jeśli sterylizacja gazowa nie jest dostępna, dopuszczalne jest zanurzenie w roztworach sterylizacyjnych (zgodnie z zaleceniami producenta dotyczącymi czasu rozcieńczania i zanurzenia) w celu dezynfekcji i sterylizacji telemetrów.
  9. Zamknij otwór brzuszny sterylnym szwem wchłanialnym 5-0 i zamknij skórę za pomocą prostego przerywanego szwu z szwem prolinowym 5-0.
    nuta: Wykazano, że umożliwienie telemetrowi unoszenia się w komorze brzusznej bez przywiązywania go do ściany brzucha (metoda zalecana przez producenta) jest skuteczne i preferowane przez autorów w celu wyeliminowania nadmiernego napięcia w ścianie brzucha podczas gojenia. Co więcej, nie ma to wpływu na zdolność odbiornika do uzyskania sygnału z emitera.
  10. Umieść mysz w czystej klatce z przenośną poduszką grzewczą pod klatką. Monitoruj mysz co 15 minut przez pierwszą godzinę po wyzdrowieniu ze znieczulenia, a następnie wróć do pomieszczenia dla zwierząt.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
5-0 Ethilon Nylon Szew MonofilamentEtyka
Adhezyjna serweta chirurgiczna z powidonem 12x18Jørgensen Labset
DR Instruments Kompleksowy zestaw do preparacji anatomii dla studentów medycynyInstrumenty DR
Zasilacz EnergizerStarr Nauki Przyrodnicze
Emiter G2 i wsp.Starr Nauki Przyrodnicze
Patterson Weterynaryjny izofluranPatterson Weterynaryjny
Odbiornik platformy i wsp.Starr Nauki Przyrodnicze
Naukowa Izba Środowiskowa Model 3911TermoForma
BK Precision Wielozakresowe programowalne zasilacze prądu stałego model 9201Precyzja BK

Przeglądaj więcej artykułów

Telemetria temperaturyjama otrzewnowaodbiornik telemetrycznysystem akwizycji danychznieczulona myszmonitorowanie pooperacyjne