Artykuł metodologiczny

Model udaru przejściowego oparty na wprowadzeniu włókien: zabieg chirurgiczny mający na celu wykonanie niedrożności tętnicy środkowej mózgu w mózgu myszy

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Llovera, G., et al. Modelowanie udaru u myszy: Przemijające zamknięcie tętnicy środkowej mózgu przez tętnicę szyjną zewnętrzną. J. Vis. Exp (2021).

Ten film opisuje procedurę rozwoju przejściowego udaru mózgu w modelu mysim przy użyciu pokrytej silikonem okluzji tętnicy środkowej mózgu opartej na włóknach. Opracowany model naśladuje ludzki udar, pomagając w ten sposób w badaniu nowych strategii terapeutycznych w leczeniu udaru.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury związane z modelami zwierzęcymi zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Przygotowanie materiału i instrumentów

  1. Podłącz koc grzewczy, aby utrzymać temperaturę obszaru operacyjnego i temperaturę ciała myszy podczas znieczulenia w temperaturze 37 °C.
  2. Używaj nożyczek i kleszczyków w autoklawie, przygotuj 70% roztwór etanolu i przygotuj do użycia maść do oczu z dekspantenolu, kilka kawałków bawełny i pleciony szew poliestrowy powlekany 5-0. Przygotuj strzykawkę o pojemności 1 ml z 0,9% roztworem soli fizjologicznej (bez igły), aby utrzymać nawodnienie miejsca nacięcia zwierzęcia. Przygotuj gaz znieczulający (100%O2 + izofluran).
  3. Przygotuj uchwyt na laserową sondę dopplerowską, odcinając końcówkę końcówki pipety o pojemności 10 μl (długość 3-5 mm).|
    UWAGA: Wszystkie narzędzia są sterylizowane za pomocą gorącego sterylizatora kulkowego. Powierzchnie są również dezynfekowane przed i po zabiegu za pomocą mikrobiologicznego środka dezynfekującego w sprayu. Przed zabiegiem obszary otaczające głowę i klatkę piersiową myszy są dezynfekowane sprayem do dezynfekcji ran.

2. Przygotowanie laserowego Dopplera

  1. Wstrzyknąć środek przeciwbólowy myszy na 30 minut przed zabiegiem (4 mg/kg karprofenu i 0,1 mg/kg buprenorfiny, dootrzewnowo).
  2. Znieczulić mysz, umieszczając ją w komorze indukcyjnej z natężeniem przepływu izofluranu 4%, aż do ustania spontanicznych ruchów ciała i wibrysów.
  3. Umieść mysz w pozycji leżącej w obszarze operacyjnym z nosem w masce anestezjologicznej. Utrzymuj stężenie izofluranu na poziomie 4% przez kolejną minutę, a następnie zmniejsz je i utrzymuj na poziomie 2%.
  4. Ustaw powiązaną poduszkę grzewczą sterowaną sprzężeniem zwrotnym, aby utrzymać temperaturę ciała myszy na poziomie 37 °C i delikatnie włóż sondę doodbytniczą, aby monitorować temperaturę podczas zabiegów chirurgicznych.
  5. Nałóż maść do oczu z dekspantenolem na oba oczy.
  6. Zdezynfekuj skórę i włosy wokół lewego oka i ucha 70% etanolem.
  7. Przetnij skórę głowy między lewym uchem a okiem (1 cm długości), aby odsłonić kość czaszki.
  8. Przetnij i wycofaj mięsień skroniowy, aby uwidocznić MCA pod czaszką.
  9. Przymocuj klejem zewnętrzną część końcówki przytrzymującej laserową sondę dopplerowską/włókno na górze lewego MCA za pomocą kleju. Następnie przyklej skórę, aby zamknąć ranę wokół uchwytu końcówki. Nałóż 2-3 krople kleju utwardzającego, aby przyspieszyć proces. Upewnij się, że laserowe włókno dopplerowskie nie jest przyklejone i można je łatwo wyjąć z uchwytu końcówki w dowolnym momencie.

3.Przejściowy model MCAo (okluzja)

  1. Obróć mysz do pozycji leżącej. Włóż pysk do stożka anestezjologicznego i przymocuj łapy taśmą.
  2. Zdezynfekuj skórę i włosy otaczające klatkę piersiową i wykonaj 2-centymetrowe nacięcie w linii środkowej szyi.
  3. Użyj kleszczy, aby rozsunąć skórę i gruczoły podżuchwowe. Użyj retraktorów, aby przytrzymać mięsień mostkowo-sutkowy, odsłonić pole operacyjne i znaleźć lewą tętnicę szyjną wspólną (CCA). Wypreparować CCA z tkanki łącznej i otaczających nerwów (bez uszkadzania nerwu błędnego) i wykonać przejściowe podwiązanie przed rozwidleniem.
  4. Rozciąć tętnicę szyjną zewnętrzną (ECA) i zawiązać stały węzeł w najbardziej dystalnej widocznej części. Umieść kolejny szew pod ECA, w pobliżu rozwidlenia i przygotuj luźny węzeł do późniejszego zastosowania.
  5. Wypreparuj tętnicę szyjną wewnętrzną (ICA) i umieść na niej klips mikronaczyniowy, 5 mm nad rozwidleniem. Upewnij się, że nie uszkodzisz nerwu błędnego.
  6. Wyciąć mały otwór w ECA między ciasnymi i luźnymi podwiązaniami; należy uważać, aby nie przeciąć całego ECA.
  7. Wprowadź filament i przesuń go w kierunku CCA. Dokręć luźne podwiązanie w ECA wokół światła, aby na krótko zabezpieczyć włókno w tej pozycji i uniknąć krwawienia podczas wyjmowania klipsa mikronaczyniowego.
  8. Zdejmij klips mikronaczyniowy i włóż filament przez ICA, aż do osiągnięcia początku MCA poprzez wykrycie gwałtownego zmniejszenia (>80%) przepływu krwi w mózgu, mierzonego za pomocą laserowego Dopplera. Zamocuj filament w tej pozycji, dalej zaciskając węzeł wokół ECA.
    nuta: Gdy filament porusza się w odpowiednim kierunku, przesuwa się płynnie i nie należy zaobserwować żadnego oporu.
  9. Rejestruj wartości laserowego Dopplera przed i po włożeniu filamentu.
  10. Usuń retraktor i przenieś mięsień mostkowo-sutkowy i gruczoły podżuchwowe przed zszyciem rany. Wyjąć laserową sondę dopplerowską i umieścić zwierzę w komorze rekonwalescencji w temperaturze 37 °C na 1 godzinę (do czasu usunięcia filamentu).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Rampa 45°BHP Kunststofftechnikwysokość: 18 cm
Zagrożenie 5/0GruszczkiNumer katalogowy: 10C103000
System znieczulenia izofluranemDräger
Pomada BepanthenBayer
Myszy C57Bl/6JRzeka Karola000664
ZaciskCertyfikat FSTNumer katalogowy: 12500-12
klipsCertyfikat FSTNumer katalogowy 18055-04
Uchwyt na klipsCertyfikat FSTLata 18057-14
CottonsNOBA Verbondmitel Danz974116
Etanol 70%CLN Chemikalien Laborbedorf521005
Etanol 96%CLN Chemikalien Laborbedorf522078
Etanol 99%CLN Chemikalien LaborbedorfETO-5000-99-1
WłóknaDoccolNumer katalogowy: 602112PK5Re
Cienkie kleszcze kątowe 45Certyfikat FSTNumer katalogowy: 11251-35
Cienkie kleszczeCertyfikat FSTRozdział 11252-23
Cienkie nożyczkiCertyfikat FSTNumer katalogowy: 14094-11
klejOrechselnZobacz materiał BSI-112
Utwardzacz KlejDrechseln & MehrZobacz materiał BSI-151
Koc grzewczyRegulator temperatury FHC DC
IzofluranopatZobacz materiał B506
IzopentanPrzywraNumer katalogowy: 59070
Doppler laserowyPerimedPF 5010 - LDPM - System peryfluxowy
5000
Laserowa sonda dopplerowskaPerimed91-00123
Komora odzyskuCiepło medyczne
Filamenty pokryte silikonemDoccolNumer katalogowy: 602112PK5Re
Vannas Nożyczki sprężynoweCertyfikat FSTNumer katalogowy 15000-00
powiedział: szt. powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Chirurgia m zgu myszyt tnica szyjna zewn trznat tnica szyjna wewn trznat tnica szyjna wsp lnafilament powlekany silikonempodwi zanie chirurgiczneznieczulona mysz

Powiązane artykuły