Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Model rogówki ex vivo świńskiego bakteryjnego zapalenia rogówki: technika ustalania infekcji bakteryjnej w komórkach nabłonka rogówki

2.9K wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Okurowska, K., et al. Establishing a Porcine Ex Vivo Cornea Model for Study Drug Treatments against Bacterial Keratitis. J. Vis. Exp (2020).

Ten film opisuje protokół tworzenia modelu ex vivo dla bakteryjnego zapalenia rogówki za pomocą guzika korneo-twardówkowego wypreparowanego z oka świni. Zaszczepione bakterie przechodzą przez nacięcia nabłonka rogówki, aby zaatakować leżące poniżej zrąb i wywołać infekcję w tkankach rogówki, która naśladuje infekcję in vivo.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE

1. Przygotowanie inokulum

  1. Wlej 10 ml bulionu LB do stożkowej kolby o pojemności 50 ml z korkiem piankowym
  2. .
  3. Przenieść kolonię szczepu PAO1 lub szczepu PA14 P. aeruginosa ze świeżej płytki agarowej i inkubować w temperaturze 37 °C przez 3-4 godziny, aż bakterie znajdą się w połowie fazy logarytmicznej.
  4. Przenieść kulturę bakterii do probówki o pojemności 50 ml i odwirować przy 3 000 x g przez 5 minut. Usunąć supernatant i ponownie zawiesić osad komórkowy w PBS.
  5. Powtórz krok 1.3 jeszcze dwa razy, aby umyć komórki. Ponownie zawiesić osad komórkowy w PBS i dostosować gęstość optyczną przy 600 nm do około 0,6, używając sterylnego PBS jako ślepej próby.

2. Zakażenie guzika oponowo-twardówkowego

  1. Usunąć pożywkę z szalki Petriego i dwukrotnie przepłukać rogówkę 1 ml sterylnego PBS.
  2. Delikatnie ściśnij kleszcze, trzymając rogówkę pomiędzy nimi. Użyj skalpela 10A, aby wykonać cztery cięcia - dwa pionowe, dwa poziome - w środkowej części guzika korneotwardówki przez warstwę nabłonka do leżącego poniżej zrębu.
  3. Umieść sterylną szklaną formę na 6-dołkowej płytce szeroką częścią do góry i umieść rogówkę na środku szklanej formy, stroną z nabłonkiem skierowaną w dół. Wykonaj nacięcie dokładnie na środku dolnej części szklanej formy.
  4. ETAP KRYTYCZNY: Wlej 1 ml 1% (w/v) agaru o niskiej temperaturze topnienia rozpuszczonego w DMEM, aby całkowicie wypełnić szklaną formę rogówką.
  5. Poczekaj, aż agar stężeje, a następnie odwróć szklaną formę tak, aby nabłonek rogówki był skierowany do góry.
  6. Odpipetować 15 μl kultury bakteryjnej o średnicy zewnętrznej600 nm = 0,6 (dla P. aeruginosa odpowiada to około 1 x 107 jednostek tworzących kolonie (CFU) w 15 μl) bezpośrednio do obszaru cięcia, a następnie dodać 85 μl PBS do góry, aby nabłonek rogówki był wilgotny. Rozcieńczyć pozostałą kulturę bakteryjną i płytkę na agarze w celu policzenia jednostek tworzących kolonie dla inokulum.
  7. Dodaj 1 ml DMEM bez antybiotyków na dno każdej studzienki za pomocą szklanej formy. Inkubować 6-dołkową płytkę z zakażonymi guzikami twardówki w nawilżanym inkubatorze w temperaturze 37 °C z 5% CO2 przez okres do 24 godzin.
  8. Zakładaj niezainfekowaną rogówkę kontrolną przy każdym eksperymencie. Aby skonfigurować niezakażoną kontrolę, zastąp 15 μl kultury bakteryjnej w kroku 2.6 sterylnym PBS.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Probówka Falcon 50 mlSlsNumer katalogowy: 352070
Amfoterycyna BSigmaNr kat. A2942
Płytka 12-dołkowa CellstarGreiner Bio-OneNumer katalogowy: 665180
DekstranSigma31425-100mg-F
DystelacjaFisher Naukowy12899357
DMEM + glutamaxSlsD0819
Inkubator z podwójnym piekarnikiemSlsOVe1020Piec sterylizujący
Naskórkowy czynnik wzrostuSlsE5036-200UG
SZYNKA F12SigmaNr kat. N4888
Surowica cielęca płoduLabtech MiędzynarodowyCA-115/500
KleszczeFisher Naukowy15307805
Heracell VIOS 160iThermo Scientific15373212Inkubator do hodowli tkankowych
Insulina rekombinowana ludzkaSls91077C-1G
Agar LBSigmaL2897
WielotronMateriały informacyjneNie dotyczyInkubator bakteryjny
PbsSlsZobacz materiał P4417
Penicylina-StreptomycynaSlsZobacz materiał P0781
szalka PetriegoFisher Naukowy12664785
szalka Petriego 35x10mm CytoOneStarlab (Laboratorium Starlab)Zobacz materiał CC7672-3340
Jod powidonuApteka Weldricks2122828
Bezpieczny 2020Fisher Naukowy1284804Komora bezpieczeństwa mikrobiologicznego klasy II
Ostrze skalpela numer 15Fisher NaukowyO305
Skalpel Swann MortonFisher Naukowy11849002
powiedział: powiedział: powiedział: powiedział:

Przeglądaj więcej artykułów

Model bakteryjnego zapalenia rogówkinacięcie nabłonka rogówkizakażenie Pseudomonas aeruginosainwazja stromalnajednostki tworzące kolonietechnika seryjnych rozcieńczeńprzygotowanie formy agarowejprotokół płukania PBSpomiar zmętnienia rogówki