Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Hodowla przedniego segmentu oka: metoda hodowli rogówki zawierającej przedni odcinek oka świni

2.7K wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Boice, E. N., Snider, E. J. Platforma hodowli narządów w przednim segmencie do śledzenia urazów na otwartej kuli i wydajności terapeutycznej. J. Vis. Exp. (2021).

W tym filmie demonstrujemy metodę hodowli przedniego segmentu oka świni z rogówką. Ten system hodowli służy jako model eksperymentalny do badania urazów oka.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Ustawianie przednich segmentów w naczyniach do hodowli narządów

  1. Umieść pojedynczy przedni segment (AS) na szalce Petriego z odwróconym AS (miseczka do góry). Za pomocą bawełnianego wacika zwilż podłoże i delikatnie wklep w środek rogówki, aby usunąć pigment. Używając kleszczy do przytrzymania oka i tego samego wacika, przetrzyj bawełniany wacik wokół twardówki, aby usunąć dodatkowy pigment.
  2. Odwróć AS i umieść na wierzchu dolnej części naczynia nad podwyższonym obszarem, centrując rogówkę nad podwyższonym obszarem naczynia. Umieść clamppierścień na nowo umieszczonym AS.
  3. Umieść cztery w odpowiednich otworach, aby utrzymać pierścień na miejscu z AS pod pierścieniem. Delikatnie dokręć ręcznie za pomocą klucza trzpieniowego.
    nuta: Etap dokręcania będzie odbywał się codziennie przez cały czas trwania eksperymentu, więc celem początkowego dokręcania jest upewnienie się, że media nie przeciekają, unikając jednocześnie zerwania pierścienia zaciskowego.
  4. Za pomocą sterylnego zestawu szalek Petriego umieść wierzch na naczyniu i odwróć ustawienie. Zamocuj stojak na naczynia. Przymocuj złącza fluidyczne z O-ringami do gwintowanych portów na spodzie naczynia.
  5. Do jednego złącza fluidycznego podłącz piastę igły 18 G wygiętą pod kątem 90°, długość rurki, piastę igły 18 G, nylonowy filtr strzykawkowy, zawór trójdrogowy i strzykawkę o pojemności 20 ml wypełnioną mediami.
  6. Do drugiego złącza fluidycznego podłącz piastę igły 18 G wygiętą pod kątem 90°, długość rurki, piastę igły 18 G, zawór trójdrogowy i część cylindryczną sterylnej strzykawki o pojemności 10 ml (będzie ona działać jako zbiornik do wyłapywania płynu i pęcherzyków z ASOC).
  7. Przy zaworach trójdrogowych otwartych odpowiednio do strzykawek, delikatnie przepchnij media przez system za pomocą portu złącza fluidics określonego w kroku 1.5, aby napompować AS, napełnić media w przewodach, a ostatecznie w zbiorniku.
    nuta: Jeśli nośnik przecieknie do czaszy ASOC, AS nie jest wystarczająco mocno zabezpieczony za pomocą clamppierścienia.
  8. Usuń bąbelki, delikatnie wpychając pożywkę do naczynia i odwracając naczynie, aby wypchnąć bąbelki do zbiornika.
  9. Postaw naczynie i stań prosto. Umieść dolną część szalki Petriego pod nóżkami podstawy, uważając, aby nie zaplątać się w rurkę.

2. Rozpoczęcie hodowli narządów przedniego segmentu

  1. ASOC jest teraz gotowy do inkubacji. Umieścić naczynie ASOC w inkubatorze do hodowli komórkowych (37 °C, 5% CO2 ). Upewnij się, że wysokość czaszy ASOC w inkubatorze powyżej przetworników ciśnienia jest znana i uwzględniona, aby dokładnie obliczyć ciśnienie wewnątrzgałkowe (IOP).
  2. Przewody rurowe należy wyprowadzić przez spód drzwi inkubatora o temperaturze 37 °C, 5% CO2 , tak aby nie przeszkadzały w otwieraniu i zamykaniu drzwi. Podłączyć strzykawkę o pojemności 20 ml do zestawu pompy strzykawkowej o natężeniu 2,5 μl/min.
  3. Umieść przewód rurowy ze zbiornikiem na przyrządzie przetwornika ciśnienia. Podłącz boczny zawór 3-drogowy do konfiguracji przetwornika ciśnienia podczas przepływu PBS przez przewód, aby uniknąć przedostawania się pęcherzyków powietrza do przewodów.
    nuta: Opróżnij PBS ze zbiorników po skonfigurowaniu systemu, aby zmniejszyć prawdopodobieństwo zanieczyszczenia zbiornika rozwojem drobnoustrojów na czas hodowli narządów.
  4. Rozpocznij zbieranie danych IOP, najpierw upewniając się, że karta microSD jest dostępna do zapisywania plików danych. Następnie włącz konfigurację przetwornika ciśnienia, aby rozpocząć zbieranie danych.

3. Codzienna konserwacja ASOC

  1. Po upływie 24 godzin od zrównoważenia przez ASOC wyjąć szalki z inkubatora o temperaturze 37 °C, 5% CO2 i umieścić je w komorze bezpieczeństwa biologicznego (BSC) II.
    nuta: Podczas zbierania danych o ciśnieniu, te okresy wyglądają jak skoki, gdy ASOC są wyjmowane z inkubatora (zmiana wysokości) i regulowane w szafie.
  2. Sprawdź, czy pod każdym szalkiem na płytce Petriego nie ma wycieków. Jeśli występuje, sprawdź, czy pod naczyniem znajdują się szczelne połączenia płynów i w razie potrzeby ponownie dokręć. Sprawdź, czy nie ma wycieków w górnej części naczynia za pomocą sterylnego klucza trzpieniowego, aby dokręcić w clamppierścieniu.
    nuta: Tkanka twardówki AS będzie kompresować i zmniejszać grubość o 24 godziny, a pierścień zaciskowy będzie musiał zostać dokręcony.
  3. Dobrze odessać pożywkę z naczynia.
    nuta: Siatka beleczkowa filtruje płyn z mediów pompowanych do ASOC. W związku z tym pożywka będzie obecna w czaszy ASOC wzdłuż krawędzi.
  4. Powtórz kroki 1.7 i 1.8, aby usunąć wszelkie uwięzione pęcherzyki powietrza.
  5. Napełnij strzykawki na pompach strzykawkowych, upewnij się, że pompy strzykawkowe działają i potwierdź ustawienie zaworów perfuzji do ASOC. Umieścić szalkę ASOC z powrotem w inkubatorze o temperaturze 37 °C, 5% CO2 .
    nuta: Optymalnie te kroki powinny być wykonywane codziennie. Jednak użycie początkowej objętości pożywki wynoszącej 20 ml, objętości studzienki czaszy ASOC i wydajności pompy 2,5 μl/min powinno wystarczyć, aby system działał bez zakłóceń przez kilka dni.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
10-32 Korek prosty z poliwęglanu, łącznik rurowy z gwintem zewnętrznymMcMaster-CarrNumer katalogowy: 51525K431
10-32 Śruba z walcowym, 1/2"McMaster-Carr92196A269
Strzykawka 10 mlBd302995
Strzykawka 20 mlBdNumer katalogowy: 302830
Anty-antyGibco (firma Gibco)Numer katalogowy: 15240-096
L z końcówką kulistąMcMaster-Carr5020A25
Przewód BD Intramedic PE 160Fisher Naukowy14-170-12E
Waciki bawełnianePuritan25-8061WC
Nośniki DMEMKontroler ATCC (Kontroler T30-2002
FBS (Sieć UsługowaKontroler ATCC (Kontroler T30-2020
Cienkie kleszczeŚwiatowe instrumenty precyzyjneNumer katalogowy: 15914
Glutamax (Glutamax)Gibco (firma Gibco)Numer telefonu 35050-061
O-ring silikonowy wysokotemperaturowy, szerokość 2 mm, średnica wewnętrzna 4 mmMcMaster-Carr5233T47
Gwóźdź (przedmiot do nakłucia)McMaster-CarrNumer katalogowy: 97808A503
Nylonowe filtry strzykawkowerybak09-719C
PbsGibco (firma Gibco)Numer katalogowy 10010-023
Poliwęglan, trójdrożny, kran z męskim zamkiem luerrybakNC9593742
Igła dozująca ze stali nierdzewnej 18 G pod kątem 90 stopniMcMaster-CarrZobacz materiał 75165A81
Igła dozująca 1/2 '' prosta ze stali nierdzewnej 18 GMcMaster-CarrZobacz materiał 75165A675
powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: TGL powiedział:

Tagi

Kultura oka świnisegment z rogówkąpompowanie segmentu okasystem perfuzji płynówmonitorowanie za pomocą przetwornika ciśnieniaprzygotowanie naczynia hodowlanegomocowanie pierścienia zaciskowegoprzygotowanie strzykawki zbiorniczejmodel trójwymiarowy