1. Przygotowanie wstępnie pokrytych płyt
- Dzień przed lub kilka godzin przed transfekcją przygotować roztwór kolagenu typu I w stężeniu 100 μg/ml w 30% etanolu z roztworu podstawowego o stężeniu 1 mg/ml. Dodać 250 μl kolagenu na dołek płytki 12-dołkowej i 125 μl na dołek płytki 24-dołkowej i rozprowadzić roztwór na powierzchni dołka.
- Pozostaw płytkę bez pokrywki pod kapturem hodowlanym, aż kolagen wyschnie. Przemyć dwukrotnie roztworem soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (D-PBS) firmy Dulbecco.
UWAGA: Płyty wstępnie powlekane są dostępne w sprzedaży.
2. Przygotowanie mieszanki transfekcyjnej
UWAGA: Końcowe stężenie siRNA wynosi od 1 do 100 nM (1 do 100 pmol siRNA na dołek płytki 12-dołkowej). Końcowe stężenie mimiku miR wynosi 10 nM (10 pmol/dołek). Określ najlepsze stężenie każdego siRNA, mimiku miR lub innego oligonukleotydu przed rozpoczęciem eksperymentu, aby uniknąć efektów niedocelowych. Wykonaj eksperymenty transfekcji w trzech egzemplarzach, aby ułatwić analizę statystyczną wyników. Przygotować wszystkie odczynniki w nadmiarze, aby uwzględnić normalne straty podczas pipetowania.
- Wymieszać przez pipetowanie (objętość/objętość) siRNA (lub innych oligonukleotydów) z ulepszoną minimalną pożywką niezbędną (Tabela 1). Inkubować przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
- Dodać odczynnik do transfekcji i ulepszone Minimal Essential Medium do siRNA i pipetować do mieszania (Tabela 1). Inkubować przez 20 minut w temperaturze pokojowej (w tym czasie przejść do sekcji 3). Dodaj mieszankę transfekcyjną do każdego dołka płytki pokrytej kolagenem.
3. Przygotowanie adipocytów 3T3-L1
- Umyć komórki na szalce Petriego o średnicy 100 mm dwukrotnie za pomocą D-PBS. Dodaj 5x trypsynę do komórek (1 ml na 100 mm szalka), upewniając się, że cała powierzchnia została pokryta trypsyną. Odczekaj 30 s i ostrożnie usuń trypsynę.
- Inkubować szalkę Petriego przez 5-10 minut w temperaturze 37 °C w inkubatorze. Dotknij czaszy 100 mm, aby odłączyć komórki.
- Dodaj 10 ml DMEM bez pirogronianu, 25 mM glukozy, 10% FCS oraz 1% penicyliny i streptomycyny, aby zneutralizować trypsynę. Ostrożnie pipetować pożywkę w górę i w dół, aby odłączyć komórki i homogenizować zawiesinę komórkową.
- Policz komórki za pomocą komory liczącej Malasseza lub automatycznego licznika komórek i dostosuj stężenie komórek do 6,25 x 105 komórek/ml pożywki. Wysiew: 800 μl zawiesiny komórek/dołka płytki 12-dołkowej (5 x 105 komórek) lub 400 μl zawiesiny komórek/basenika płytki 24-dołkowej (2,5 x 105 komórek) zawierającej mieszaninę transfekcyjną.
nuta: Jedna 100-milimetrowa szalka Petriego z adipocytami pozwoli na przygotowanie jednej płytki 12-dołkowej lub jednej płytki 24-dołkowej. Naczynie o średnicy 100 mm zawiera zwykle 6-7 x 106 adipocytów, co odpowiada 5 x 105 adipocytów na dołek 12-dołkowej płytki.
- Inkubować płytki w inkubatorze do hodowli komórkowych (7% CO2 i 37 °C) i nie naruszać komórek przez 24 godziny. Następnego dnia ostrożnie zastąp supernatant świeżym DMEM bez pirogronianu, 25 mM glukozy, 10% FCS oraz 1% penicyliny i streptomycyny.
UWAGA: Możliwe jest również wysiewanie komórek na 48- i 96-dołkowych płytkach pokrytych kolagenem, ale należy zachować więcej środków ostrożności podczas wymiany pożywki, aby uniknąć oderwania adipocytów.
| Na studzienkę (płytka 12-dołkowa) | Na studzienkę (płytka 24-dołkowa) |
| Oligonukleotydy | 20 μL | 10 μL |
| (si-RNA, miR...) |
| Ulepszone minimalne niezbędne podłoże | 20 μL | 10 μL |
| Odczynnik do transfekcji | 5,6 μl | 2,8 μl |
| Ulepszone minimalne niezbędne podłoże | 154,4 μL | 77,2 μL |
| Całkowita objętość mieszanki transfekcyjnej | 200 μL | 100 μL |
Tabela 1: Odczynniki do transfekcji wymagane dla płytek 12-dołkowych i 24-dołkowych.