Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Elektroforeza żelowa zymografii: technika elektroforetyczna do wykrywania metaloproteinaz macierzy poprzez ocenę aktywności enzymatycznej

3.1K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Hu, X. et al., Wykrywanie funkcjonalnych metaloproteinaz macierzy za pomocą Zymografii. J. Vis. Exp. (2010)

Ten film demonstruje technikę elektroforezy żelowej zymografii do oceny aktywności metaloproteinaz macierzy (MMP) obecnych w supernatancie hodowli komórkowej. Aktywne MMP degradują specyficzny dla MMP substrat osadzony w żelu poliakrylamidowym, który po barwieniu pojawia się jako przezroczyste pasma na ciemnym zabarwionym tle.

Protokół

1. Ładowanie i uruchamianie żelu

  1. Wszystkie próbki muszą być odpowiednio przygotowane, aby utrzymać funkcję enzymów i wykorzystane natychmiast po pobraniu lub przechowywane w stanie zamrożonym w temperaturze -80 °C. Próbki nie mogą zawierać środków redukujących (takich jak β-merkaptoetanol) ani nie mogą być gotowane przed załadowaniem żelem.
  2. Otwórz saszetkę zawierającą żel wewnątrz kasety, przepłucz kasetę wodą dejonizowaną.
    1. Usuń taśmę ochronną z dolnej części kasety i grzebień z górnej części żelu.
    2. Przepłukać studzienki trzykrotnie działającym buforem (rozcieńczonym do 1X w wodzie dejonizowanej).
    3. Umieść żel w Mini-Cell, upewniając się, że mniejsza strona kasety jest skierowana do wewnątrz. Zablokuj na miejscu za pomocą żelowego klina napinającego. Mini-Cell pozwala na równoległe prowadzenie jednego lub dwóch żeli.
    4. Napełnij górną (wewnętrzną) komorę buforem 1X biegnącym powyżej poziomu studni, sprawdź, czy nie ma wycieków. W przypadku nieszczelności należy usunąć bufor i ponownie umieścić żel.
    5. Napełnij dolną komorę buforem roboczym 1X.
  3. Załaduj 10 μl markera molekularnego białka do jednego dołka.
    1. Wymieszać równą ilość buforu ładującego żel i próbki, a następnie załadować do studzienek żelu za pomocą końcówek do ładowania żelu (zmienianych między każdą próbką). Studzienki te można załadować łącznie do 20 μl.
  4. Załóż pokrywę na Mini-Cell i podłącz przewody elektrod do zasilania. Włącz zasilanie i ustaw je tak, aby działało na stałym napięciu 125 V przez 90 minut. Sprawdź tworzenie się małych pęcherzyków na drucie dolnej komory, wskazujących na cyrkulację prądu.
  5. Podczas uruchamiania pierwszego żelu monitoruj postęp migracji co 15 minut, używając jako wskaźnika błękitu bromofenolowego zawartego w buforze ładującym. Pozwól żelowi działać, aż barwnik wskaźnikowy dotrze do dna żelu.

2. Odnawianie i rozwijanie żelu

  1. Dla każdego żelu przygotuj 100 ml buforu renaturyzującego 1X i 200 ml buforu denaturującego, oba w wodzie dejonizowanej.
  2. Gdy niebieski barwnik tropiący bromofenol dotrze do dna żelu, wyłącz zasilanie, otwórz Mini-Cell i usuń żel. Oddziel dwie strony kasety za pomocą noża do żelu (lub szpatułki do ważenia). Wytnij róg, aby zaznaczyć kierunek żelu.
  3. Ostrożnie wyjąć żel z kasety i umieścić w pojemniku ze 100 ml buforu do renaturyzacji. Inkubować przez 30 minut w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem.
  4. Usunąć bufor do renaturyzacji i dodać do żelu 100 ml buforu rozwijającego. Inkubować przez 30 minut w temperaturze pokojowej z delikatnym mieszaniem.
  5. Usunąć bufor rozwijający i dodać do żelu 100 ml więcej buforu rozwijającego. Inkubować przez noc (16-18 godzin) w temperaturze 37°C.
  6. Usunąć rozwijający się bufor i spłukać trzy razy (po 5 minut) wodą dejonizowaną pod delikatnym mieszaniem w temperaturze pokojowej.
  7. Zeskanuj żel, aby zapisać dokładne położenie standardowych pasm białkowych, ponieważ po barwieniu żelem staną się one mniej widoczne lub nie będą widoczne.
  8. Zabarwić żel, dodając do niego 20 ml SimplyBlue Safestain. Inkubować przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej pod delikatnym mieszaniem.
  9. Usuń SimplyBlue SafeStain i odplam żel w 100 ml lub więcej dejonizowanej wodzie przez jedną godzinę w temperaturze pokojowej pod delikatnym mieszaniem.
  10. Aby uzyskać lepsze wyniki, zastąp świeżą wodą dejonizowaną i inkubuj przez kolejną godzinę lub dłużej w temperaturze pokojowej pod delikatnym mieszaniem.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Aparatura do elektroforezy Xcell SureLock Mini-Cell ze znakiem CEInvitrogenNumer EI0001
Zasilacz (model 302)Firma VWR93000-744
Novex 10% żelatynowe żele zymogramowe, 1,0 mm, 12 dołkówInvitrogenEC61752BOX
Bufor ładujący żel Blue JuiceInvitrogen10816015
Końcówki do ładowania żeluFirma VWR53509-015
Wzorzec masy cząsteczkowej białkaInvitrogenLC5800
Bufor do pracy Novex Tris-Glycine-SDSInvitrogenLC2675
Bufor do renaturyzacji zymogramu NovexInvitrogenLC2670
Bufor rozwojowy Novex zymogramInvitrogenLC2671
SimplyBlue SafeStainInvitrogenLC6060
powiedział: powiedział: powiedział: powiedział: powiedział:

Tagi

Wykrywanie metaloproteinaz macierzytest aktywności enzymatycznejtechnika SDS-PAGEżel do zymografii żelatynowejpasma standardu białkowegobufor SDS Tris-glicynainkubacja w buforze renaturującyminkubacja w buforze wywoływającymSimplyBlue SafeStain