Artykuł metodologiczny

Ilościowa reakcja łańcuchowa polimerazy w celu zliczenia bakteriofagów

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Peng, X., et al., Ilościowy PCR bakteriofaga T7 z Biopanning. J. Vis. Exp. (2018)

W tym filmie omawiamy ilościową reakcję łańcuchową polimerazy, qPCR, w celu wyliczenia bakteriofagów T7 poprzez kwantyfikację DNA. Barwnik fluorescencyjny w mieszaninie PCR wiąże się z nowo zsyntetyzowanymi niciami DNA i emituje fluorescencję, która jest mierzona.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotuj reakcje qPCR

UWAGA: Jedna reakcja PCR dotyczy jednej próbki. Każda reakcja PCR zawiera 5 μl głównej mieszaniny qPCR (patrz materiały), 1 μl mieszaniny 5 μM par starterów, 2 μLH2Oi 2 μl próbki faga T7 poddanej obróbce cieplnej. W przypadku wielokrotnych reakcji PCR wszystkie odczynniki z wyjątkiem próbki faga są wstępnie mieszane w jednej probówce o pojemności 1,5 ml. Objętość każdego odczynnika w premiksie zależy od liczby próbek fagów do qPCR.

  1. Przygotować premiks qPCR dla 10 biopanowanych próbek fagów o nieznanym stężeniu i 7 próbek o standardowych stężeniach w trzech egzemplarzach. W rezultacie mamy do czynienia z 51 próbkami ogółem, a zatem 51 reakcji qPCR (tj. jedna reakcja na próbkę). Dla 51 reakcji należy przygotować premiks składający się z 255 μl głównej mieszanki qPCR (51x 5 μL), 51 μl starterów (51x 1 μL) i 102 μLH2O(51x 2 μL).
    nuta: Zaleca się przygotowanie kilku dodatkowych reakcji PCR w celu skompensowania utraty objętości podczas porcjowania mieszaniny PCR do każdego dołka 96-dołkowej płytki qPCR.
  2. Podaniec 8 μl premiksu PCR do każdego dołka 96-dołkowej płytki qPCR, co daje w sumie 51 dołków (tj. 51 reakcji qPCR). Nie ma potrzeby wymiany końcówek podczas porcjowania.
  3. Dodać 2 μl poddanych obróbce cieplnej próbek fagów T7 lub referencyjnego DNA faga T7 do każdej studzienki (ryc. 1B); zmieniaj końcówki podczas dodawania różnych próbek DNA do studzienki, aby zapobiec zanieczyszczeniu krzyżowemu. Należy również dozować 2 μl próbek DNA pod powierzchnią premiksu qPCR (tj. do premiksu 8 μl PCR).
  4. Uszczelnij płytkę qPCR folią samoprzylepną.
    nuta: Ten krok ma kluczowe znaczenie, niezależnie od rodzaju płytki qPCR. Użyj zalecanego zestawu, aby całkowicie uszczelnić płytę; w przeciwnym razie każdy nieuszczelniony obszar na płytce spowoduje utratę objętości podczas cykli PCR.
  5. Owiń płytkę qPCR folią aluminiową, aby zminimalizować fotowybielanie fluorescencyjne i przystąp do uruchamiania jej na sprzęcie qPCR.

2. warunki cykliczne qPCR

UWAGA: warunki cykliczne qPCR zostały ustawione na konkretnym sprzęcie qPCR.

  1. Uruchomić 96-dołkową płytkę qPCR na sprzęcie qPCR. Na urządzeniu wybierz ustawienia z menu, aby skonfigurować następujące warunki eksperymentalne (Rysunek 1C).
  2. Dla objętości próbki 10 μl należy ustawić następujące warunki cykliczne: jeden cykl w temperaturze 50°C przez 2 minuty, jeden cykl w temperaturze 95°C przez 2 minuty, a następnie 40 cykli (95°C przez 15 s, 60°C przez 1 min). Następnie uruchom ustawienia krzywej topnienia: jeden cykl 95°C przez 15 s, 60°C przez 1 min i 95°C 15 s.
  3. Przejdź do analizy danych.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Traktowanie próbki fagowej, przygotowanie reakcji qPCR i przebieg qPCR. Próbki faga T7 poddane wstępnej obróbce DNazy I podgrzewano w temperaturze 100 ° C przez 15 minut w celu uwolnienia DNA T7 z nienaruszonych cząstek faga (A); mieszaninę qPCR przygotowano zgodnie z opisem w protokole. Wszystkie przygotowania odbywały się na lodzie (A); Sprzęt qPCR i ko...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Startery dla genomowego DNA T7Identyfikator IDTF: CCTCTTGGGAGGAAGAGATTTG R: TACGGGTCTCGTAGGACTTAAT
Kontrola DNA opakowania T7 SelectEMD Milipore69679-1UG
Optyczna 96-dołkowa płytka reakcyjna MicroAmpThermoFisher NaukowyN8010560
qPCR master mix-Power up SYBR Green master mixBiosystemy stosowaneBiosystemy stosowane
Zestaw optycznych folii samoprzylepnych MicroAmpThermoFisher NaukowyThermoFisher Naukowy
UltraPure DNazy/RNazy destylowaneH2OInvitrogen10977015
System ViiA7 do PCR w czasie rzeczywistym z szybkim blokiem 96-dołkowymThermoFisher Naukowy4453535
QuantStudio Oprogramowanie do PCR w czasie rzeczywistymThermoFisher Naukowywersja 1.2

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Enumeracja bakteriofag wbakteriofag T7analiza qPCRkwantyfikacja DNAfluorescencyjny barwnik raportuj cyanaliza krzywej topnieniapr g cyklu Ctbakteriofagi poddane obr bce termicznejprzygotowanie p ytki do qPCR

Powiązane artykuły