1. Wytwarzanie kropelek i PCR
UWAGA: Tabela 1 przedstawia informacje o starterach do przodu i do tyłu wraz z podwójnie hartowanymi sondami hydrolizy dla genów C-LESS, CD3Z i Foxp3, które są wymagane do multipleksowej amplifikacji celów demetylowanych genów.
- Przygotować mieszankę wzorcową zgodnie z opisem w tabeli 2.
- Rozmrozić wszystkie składniki mieszanki wzorcowej z wyjątkiem mieszaniny enzymatycznej. Dokładnie wymieszaj mieszankę główną, pipetując góra-dół, a następnie krótko odwiruj.
- Dodać odpowiednią objętość (1 μl) DNA przekształconego w wodorosiarczyn do mieszanki głównej w probówce do PCR. Wymieszać reakcję, pipetując góra-dół i krótko odwirować.
- Podłącz jednorazowy przewód płynowy (średnica wewnętrzna 0,25 mm, średnica zewnętrzna 1,6 mm) do dwóch precyzyjnych szklanych strzykawek (objętość 250 μl) za pomocą złączek PEEK.
- Napełnij jedną precyzyjną szklaną strzykawkę 250 μl oleju nośnikowego zawierającego 5% fluoro-surfaktantu.
- Przed załadowaniem 100 μl mieszanki PCR należy wstępnie napełnić kolejną precyzyjną szklaną strzykawkę 50 μl oleju nośnikowego, aby zapewnić dozowanie całej objętości próbki podczas emulgacji.
- Ustaw kropelkowe urządzenie mikroprzepływowe na stoliku pionowego mikroskopu świetlnego wyposażonego w szybką kamerę, aby obserwować i rejestrować powstawanie kropel w czasie rzeczywistym.
- Umieścić ampułkostrzykawki na programowalnej pompie strzykawkowej i za pomocą złączki PEEK ze złączkami (patrz Tabela materiałów) podłączyć rurki strzykawek do przewodów odpowiednich kanałów wlotowych kropelkowego urządzenia mikroprzepływowego.
- Umieść rurkę z wylotu generatora kropel w probówce PCR o pojemności 0.5 ml.
- Dostosować natężenie przepływu pompy strzykawkowej do 2 μl/min i pozwolić, aby wielkość kropli ustabilizowała się przed zebraniem powstałej emulsji.
- Zebrać emulsję i przenieść 75 μl do probówki PCR o pojemności 0,2 ml w celu przeprowadzenia cykli termicznych.
- Upewnij się, że zawartość oleju w probówce PCR ściśle odpowiada objętości fazy rozproszonej, aby zapobiec koalescencji kropelek podczas cykli termicznych.
- Umieścić probówkę PCR o pojemności 0,2 ml w termocyklerze i wykonać protokół cykliczny w następujący sposób: podgrzewanie w temperaturze 95 °C przez 5 minut, następnie 45 cykli denaturacji w temperaturze 95 °C przez 15 s i wyżarzanie/przedłużanie w temperaturze 60 °C przez 30 s.
Tabela 1: Konstrukcja sondy gruntującej i hydrolizy.
C
| FOXP3 Naprzód | GGG TTT TGT TGT TAT AGT TTT TG |
| FOXP3 Rewers | TTC TCT TCC TCC ATA ATA TCA |
| CD3Z do przodu | GGA TGG TTG TGG TGA AAA GTG |
| CD3Z Rewers | CAA, AAA, CTC, CTT, TCT, TCC, TAA, CCA |
| C-LESS do przodu | TTG TAT GTA TGT GAG TGT GGG AGA GA |
| C-LESS Rewers | TTT CTT CCA CCC CTT CTC TTC C |
| Sonda FOXP3 | /56-FAM/CA ACA CAT C/ZEN/C AAC CAC CAT /3IABkFQ/ |
| Sonda CDZ3 | /56-HEX/CC AAC CAC C/ZEN/A CTA CCT CAA /3IABkFQ/ |
| Sonda bezprądowa | /56-CY5/CT CCC CCT C/ZEN/T AAC TCT AT/3IABkFQ/ |
Tabela 2: Receptura mieszanki wzorcowej dla mdPCR.
| Odczynnik | Roztwór podstawowy | Głośność miksu głównego | Koncentracja robocza |
| Tris-HCl | 1 mln | 2 μl | 20 mM |
| Kcl | 1 mln | 10 μL | 100 mM |
| MgCl2 | 25 mM | 16 μL | 4 mM |
| Podkłady C-LESS | 10 μM | 10 μL | 1 μM każdy |
| Podkłady CD3Z | 10 μM | 10 μL | 1 μM każdy |
| Podkłady FOXP3 | 10 μM | 10 μL | 1 μM każdy |
| Sonda C-LESS | 10 μM | 5 μL | 500 nM |
| Sonda CD3Z | 10 μM | 5 μL | 500 nM |
| Sonda FOXP3 | 10 μM | 5 μL | 500 nM |
| Polimeraza DNA HotStarTaq | 5 jednostek/μL | 8 μL | 0,4 jednostki/μl |
| Cel DNA traktowany wodorosiarczynem | zmienna | zmienna | zmienna |
| Woda wolna od nukleaz | | zmienna | |
| Całkowita objętość | | 100 μL | |