$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Analiza ELISA interakcji między rekombinowanym PH i Vn
UWAGA: Kontrolki muszą być dołączone, aby wykluczyć niespecyficzne powiązania. Ludzki czynnik H (FH) lub białko wiążące C4b (C4BP) są stosowane odpowiednio jako kontrole pozytywne i ujemne.
- Rozcieńczyć każde z ludzkich białek (Vn, FH i C4BP) oddzielnie do 50 nM w Tris-HCl, pH 9,0 (bufor otoczkowy). Dozować 100 μl roztworu białkowego do każdego dołka płytki do mikromiareczkowania Polysorp. Zamknąć płytki pokrywką i przechowywać je w temperaturze 4 °C przez noc (16 godzin), aby ułatwić unieruchomienie białka na dołkach na płytki do mikromiareczkowania.
- Wyrzuć roztwór z płytki do mikromiareczkowania, przechylając ją do góry nogami nad zlewem i umyj studzienki trzykrotnie 300 μl PBS/studzienkę. Zatkać powlekane studzienki na 1 godzinę w temperaturze pokojowej z PBS zawierającym 2,5% (w/v) BSA (PBS-BSA).
- Po usunięciu roztworu blokującego przemyć studzienki trzykrotnie 300 μl PBS zawierającego 0,05% (v/v) Tween 20 (PBST) na studzienkę. Dodać 100 μl rekombinowanego pH znakowanego His o stężeniu 50 nM do każdej studzienki próbki i inkubować przez 1 godzinę w temperaturze suchej. W studzienkach kontrolnych dodać tylko 100 μl PBS-BSA.
nuta: Gen lph kodujący PH z Hif został amplifikowany metodą PCR i sklonowany do wektora ekspresyjnego pET26b, który dodaje znacznik 6× His na C-końcu wyrażonego białka. Wektor rekombinowany przekształcono w E. coli BL21(DE3) w celu ekspresji. Do oczyszczenia rekombinowanego białka użyto żywicy Ni-NTA.
- Odrzucić roztwór białkowy i usunąć niezwiązane białka, przemłukując studzienki trzykrotnie 300 μl PBST na studzienkę. Dodać 100 μl PBS-BSA zawierającego anty-His pAbs sprzężone z peroksydazą chrzanową (HRP) (rozcieńczenie 1:10 000) i inkubować przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej.
- Przygotować 20 mM roztwór A, rozpuszczając tetrametylobenzydynę w roztworze 5% acetonu i 45% metanolu. Aby przygotować roztwór B, rozpuść 19,2 g kwasu cytrynowego w 1000 mlH2O, dostosuj pH do 4,25 przez dodanie KOH, a następnie dodaj 230 μl 30%H2O2. Przechowuj oba roztwory w ciemności w RT. Tuż przed użyciem wymieszaj 500 μl roztworu B z 9,5 ml roztworu A, aby przygotować odczynnik do wykrywania ELISA.
- Przemyć studzienki trzykrotnie 300 μl PBST na studzienkę i wykryć kompleksy antygen-przeciwciało, dodając 100 μl odczynnika wykrywającego ELISA do każdej studzienki.
- Dodać 50 μl 1 M H2SO4 / studzienkę, aby zatrzymać reakcję. Zmierzyć gęstość optyczną studzienek przy 450 nm za pomocą czytnika mikropłytek.