Artykuł metodologiczny

Test modulacji pH na podpartych dwuwarstwach lipidowych w celu wykrycia interakcji białko-fosfoinozytyd

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Shengjuler, D., et al., -on-a-chip: Bezznacznikowe badanie interakcji białko-fosfoinozytyd. J. Vis. Exp. (2017)

W tym filmie demonstrujemy interakcje białko-fosfoinozytyd we wzorcu mikroprzepływowym za pomocą testu modulacji pH, używając wrażliwego na pH barwnika fluorescencyjnego oznaczonego lipidem fosfatydyloetanoloaminy w dwuwarstwie lipidowej, zwanej platformą mikroprzepływową. Modulacje pH po związaniu białka z fosfolipidem powodują wygaszanie fluorescencji.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Tworzenie wspieranych dwuwarstw lipidowych (SLB)

  1. Przenieść 100 μl SUV-ów zawierających PI(4,5)P2 do probówki mikrowirówkowej o pojemności 0,65 ml. Doprowadzić pH roztworu do ~3,2 dodając 6,4 μl 0,2 N kwasu solnego.
    nuta: Potwierdzić pH roztworu za pomocą pH-metru wyposażonego w mikrosondę pH (patrz tabela materiałów).
  2. Odpipetować 10 μl roztworu SUV o dostosowanym pH do każdego kanału przez wlot i wywierać ciśnienie przez pipetę, aż roztwór dotrze do wylotu. Odłącz końcówkę od pipety i pozostaw ją przymocowaną do urządzenia.
  3. Powtórz powyższy krok dla każdego kanału, a następnie inkubuj urządzenie przez 10 minut w temperaturze RT.
    nuta: Iniekcja pęcherzyków do mikrokanalików powinna być wykonana bezpośrednio po montażu urządzenia.
  4. Wytnij zestawy rurek wlotowych i wylotowych odpowiednio o długości 60 cm (rura wlotowa) i 8 cm (rurka wylotowa).
    nuta: Przecięcie rurki po przekątnej i utworzenie ostrej krawędzi ułatwia wkładanie rurki do wlotów i wylotów. Rurka wylotowa powinna mieć kształt łuku. Długość rurki dopływowej może się różnić w zależności od konfiguracji mikroskopu. Średnica wewnętrzna rurki wynosi 0,05 cm.
  5. Za pomocą pęsety podłącz zestaw wężyków wylotowych do urządzenia, a następnie przyklej urządzenie do stolika mikroskopu.
  6. Zanurz jeden koniec zestawu rurki wlotowej w 25 ml buforu roboczego zawartego w stożkowej rurce i przyklej go taśmą, aby upewnić się, że przewód jest zabezpieczony.
  7. Umieść stożkową rurkę na wyższym podłożu (~20 cm) niż urządzenie, aby przepchnąć roztwór przez mikrokanaliki za pomocą przepływu grawitacyjnego; można w tym celu użyć podnośnika laboratoryjnego.
  8. Do każdej rurki wlotowej użyj strzykawki, aby pobrać 1 ml buforu z wolnego końca rurki. Wyjmij końcówkę pipety z wlotu i włóż wolny koniec rurki wlotowej do urządzenia.
    nuta: Wprowadzić kroplę buforu roboczego na wlot, aby zmniejszyć prawdopodobieństwo wprowadzenia pęcherzyków powietrza do kanału podczas tego etapu. Po podłączeniu rurki dopływowej do urządzenia użyj niestrzępiącej się ściereczki, aby usunąć nadmiar bufora.
  9. Powtórz powyższy krok, aby podłączyć wszystkie elementy rurki dopływowej do urządzenia.
    nuta: Przepływający bufor przepływowy przez kanały pomaga usunąć nadmiar pęcherzyków i zrównoważyć dwuwarstwę do warunków eksperymentalnych.
  10. Otwórz oprogramowanie sterujące mikroskopem (patrz tabela materiałów). Na lewym panelu kliknij zakładkę "Mikroskop" i wybierz obiektyw "10X".
  11. Kliknij ikony obrazu "Na żywo", a następnie "Alexa 568" na pasku narzędzi. Za pomocą pokręteł regulacji kursu i regulacji kursu skup się na mikrokanałach.
  12. Przeskanuj urządzenie, aby sprawdzić jakość SLB i kanałów (Rysunek 1). Następnie kliknij ikonę obrazu "FL Shutter Closed" na pasku narzędzi.
  13. Kliknij zakładkę "Akwizycja" i w sekcji "Podstawowe korekty" wybierz "Czas ekspozycji". Ustaw czas naświetlania na "200 ms".
  14. Na lewym panelu kliknij "Multidimensional Acquisition" i pod menu filtrów wybierz czerwony kanał (oznaczony jako "Alexa 568"). Następnie kliknij menu "upływ czasu", ustaw przedział czasu na 5 minut, czas trwania na 30 minut i kliknij "Start".
    nuta: W zależności od czasu trwania (30 min) i natężenia przepływu (~1,0 μL/min), do zrównoważenia SLB w kanale używa się 30 μl bufora roboczego, tj. 240 μL bufora roboczego stosuje się dla wszystkich 8 kanałów.
  15. Wybierz narzędzie "Okrąg" w zakładce "Zmierz" i narysuj okrąg w dowolnym kanale. Kliknij prawym przyciskiem myszy, gdy okrąg jest zaznaczony i wybierz "Właściwości". W zakładce "Profil" zaznacz "wszystkie T", aby wyświetlić intensywność fluorescencji w funkcji czasu.
    1. Upewnij się, że ta krzywa osiąga plateau, co wskazuje równowagę, zanim przejdziesz do następnego kroku.
  16. Opuścić roztwór buforowy do równego podłoża co urządzenie, aby zatrzymać przepływ.
  17. Zapisz plik poklatkowy.

2. Testowanie interakcji PLC-δ1 PH w domenie z SLB zawierającymi PI(4,5)P2

  1. Przygotować rozcieńczenia domeny PH, używając uruchomionego buforu jako rozcieńczalnika.
    nuta: Ponieważ w urządzeniu znajduje się osiem kanałów, użyj co najmniej dwóch z nich do pustych elementów sterujących. Wybierz dalsze końce z każdej strony i użyj pozostałych kanałów do rozcieńczania białek. Badano następujące stężenia w domenie pH: 0,10, 0,25, 0,50, 1,00 i 2,50 μM. Około 200 μl każdego rozcieńczenia wystarczało do osiągnięcia równowagi w ciągu 30 minut.
  2. Pojedynczo odłącz każdą rurkę wylotową i nałóż 200 μl każdego rozcieńczonego białka do kanału wylotowego za pomocą pipety. Nie wywieraj żadnego nacisku, pozwól, aby grawitacja wykonała pracę. Odłącz końcówkę od pipety i pozostaw ją przymocowaną do urządzenia mikroprzepływowego.
  3. Powtórz powyższy krok dla każdego kanału i upewnij się, że podczas tego procesu do kanałów nie zostaną wprowadzone pęcherzyki powietrza.
  4. Opuść rurkę wlotową na ziemię poniżej urządzenia mikroprzepływowego, aby rozpocząć przepływ białka przez mikrokanały. Przyklej wolny koniec rurki do pojemnika na odpady. Rozcieńczenia białka płynąć przez 30 min.
    nuta: Spowoduje to odwrócenie przepływu i umożliwi wprowadzenie białka do kanałów. Czas do zrównoważenia i objętość potrzebnych rozcieńczeń białek będą zależeć od powinowactwa oddziaływania.
  5. W lewym panelu oprogramowania, w zakładce "Upływ czasu", kliknij "Start", aby ponownie rozpocząć obrazowanie.
  6. Po zakończeniu eksperymentu zapisz plik poklatkowy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Ocena integralności SLB i mikrokanałów. (A) Obraz ilustrujący wysokiej jakości SLB i mikrokanały. (B) Niepełna fuzja. (C) Stopione mikrokanały. (D) Cząstka pyłu uwięziona w mikrokanaliku. (E) Pęcherzyki powietrza uwięzione w mikrokanałach.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1-palmitoilo-2-oleoilo-sn-glicero-3-fosfocholinaLipidy polarne Avanti850457CPOPC
L-α-fosfatydyloinozytolo-4-fosforanLipidy polarne Avanti840045XPI4P (Czujnik PI4P
L-α-fosfatydyloinozytolo-4,5-bisfosforanLipidy polarne Avanti840046XPI(4,5)P2
1-palmitoilo-2-oleoilo-sn-glicero-3-fosfoetanoloaminaLipidy polarne Avanti850757Cpapież; Wymagane do syntezy oSRB-POPE
Liszamina Rodamina B Chlorek sulfonylu (mieszanina izomerów)ThermoFisher NaukowyL-20Wymagane do syntezy oSRB-POPE
Fluorescencyjna sonda lipidowa wrażliwa na pH (oSRB-POPE)Na miejscuN/aSynteza wewnętrzna (Huang D. i in. 2013)
Mikroskop epifluorescencyjny Axiovert 200MMikroskopia Carla ZeissaN/amikroskop
Kamera AxioCam MRmMikroskopia Carla ZeissaN/akamera
X-Cite 120Technologie ExcelitasN/aŹródło światła
Zestaw filtrów Alexa 568Mikroskopia Carla ZeissaN/aEx/Em 576/603 nm
Oprogramowanie AxioVision LE64 v.4.9.1.0Mikroskopia Carla ZeissaN/aOprogramowanie do przetwarzania obrazu
PoradyFirma VWRNumer katalogowy: 10034-132końcówki do pipet 200 μl; Cienka i gładka końcówka do nakładania roztworu białkowego do kanału mikroprzepływowego
PoradyFirma VWR53509-070końcówki do pipet 10 μl; Cienka i gładka końcówka do nakładania roztworu pęcherzykowego do kanału mikroprzepływowego
pH-metr Orion Star A321Thermo ScientificSTARA3210pH-metr
Mikrosonda pH OrionThermo Scientific8220BNWPmikrosonda pH
Kwas N-(2-hydroksyetylo)-piperazyno-N'-(2-etanosulfonowy)Firma VWRVWRB30487HEPES, Wolny kwas
chlorek soduFirma VWRBDH8014-2,5 kg na sekundęZawartość NaCl
RuryAllied Wire & Cable (Sprzymierzone przewody iPrzekaźnik TFT-200-24 NŚrednica wewnętrzna: 0,020-0,026 cala (0,051-0,066 cm); Grubość ścianki: 0,010 cala (0,025 cm); Elastyczne cienkościenne rurki z politetrafluoroetylenu; Naturalny kolor
Azot gazowy - przemysłowyLinie lotnicze PraxairN/aLokalny dostawca
Tlen gazowy - przemysłowyLinie lotnicze PraxairN/aLokalny dostawca
Ciekły azotLinie lotnicze PraxairN/aLokalny dostawca
) )

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wi zanie fosfolipazy Cdetekcja wygaszania fluorescencjiplatforma mikrofluidycznama e p cherzyki jednob onkowepH wra liwy barwnik fluorescencyjnyfosfatydyloinozytol 45 bisfosforandomena homologiczna plekstryny

Powiązane artykuły