$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE
1. Ocena przepływu krwi w mózgu za pomocą dylacyjnej spektroskopii korelacji
- Akwizycja danych DCS
- Usuń włosy ze skóry głowy. Ponieważ DCS działa najlepiej w przypadku braku włosów, konieczne jest usunięcie sierści na głowie przed rozpoczęciem eksperymentów. Zazwyczaj depilacja jest wykonywana 1-3 dni przed rozpoczęciem badania.
- Indukuj myszy 4,5% izofluranem w 100% tlenu przez 45 sekund i utrzymuj 1-2% izofluranu w 100% tlenie.
- Ogol głowę między oczami a uszami. Następnie użyj kremu do depilacji, aby usunąć sierść na głowie, jak na rysunku 1.
- Pozwól zwierzęciu dojść do siebie po znieczuleniu na podkładce rozgrzewającej, a następnie wróć do klatki.
- Zmierz przepływ krwi w mózgu za pomocą DCS. Aby zminimalizować artefakty ruchu podczas pomiaru, badaj myszy w krótkim znieczuleniu izofluranem.
nuta: Monitoruj wizualnie oddychanie i reakcję na szczypanie palców u nóg podczas pomiarów i dostosuj stężenie izofluranu w razie potrzeby, aby zapewnić stałą głębokość znieczulenia. Znaczne różnice w głębokości znieczulenia mogą zmieniać przepływ krwi, biorąc pod uwagę znane działanie izofulranu na naczynia krwionośne.
- Indukować 4,5% izofluranu w 100% tlenu przez 45 sekund, a następnie utrzymywać 1,0-1,75% izofluranu w 100% tlenie. Potwierdź wystarczającą głębokość znieczulenia poprzez brak reakcji na uszczypnięcie palca u nogi i normalne oddychanie (między ~60-80 oddechami na minutę).
- Po 2-minutowym okresie stabilizacji delikatnie oprzyj czujnik DCS na prawej półkuli tak, aby górna krawędź czujnika optycznego zrównała się z tyłem oka, a bok czujnika zbiegł się wzdłuż linii środkowej (rysunek 1). Przyłóż dłoń do czujnika, aby osłonić go przed światłem w pomieszczeniu. Pozyskanie danych w ciągu 5 sekund (akwizycja z częstotliwością 1 Hz).
- Ustaw czujnik na lewej półkuli i uzyskaj 5 sekund danych.
- Powtórz 3 razy na półkulę, aby uwzględnić lokalne niejednorodności pod powierzchnią tkanki.
- Odzyskiwania
- Wyjmij mysz ze znieczulenia i umieść ją na podkładce rozgrzewającej.
- Po tym, jak mysz odzyska odruch prostowania, załóż ją z powrotem do klatki.