Wszystkie procedury z udziałem ludzi zostały przeprowadzone zgodnie z instytucjonalnymi, krajowymi i międzynarodowymi wytycznymi dotyczącymi dobrobytu ludzi i zostały sprawdzone przez lokalną komisję rewizyjną instytucji.
1. Izolacja i oczyszczanie ludzkich komórek B krwi obwodowej
- Pobrać ~ 10 ml krwi z żyły łokciowej środkowej (w dole łokciowym przed łokciem) do 15-mililitrowej probówki zawierającejK2EDTA(1,5 do 2,0 mg/ml krwi) i natychmiast kilkakrotnie odwrócić probówkę, aby zapobiec tworzeniu się skrzepów.
- Dodać 35 ml autoklawizowanego (121 °C, 15 min) buforu do lizy krwinek czerwonych (RBC) (150 mM NH4Cl, 10 mM KHCO3 i 1 mM EDTA; pH 7,4) do probówki zawierającej świeżą próbkę krwi (≥ 3:1 obj./obj.) i inkubować w temperaturze pokojowej (RT) nie dłużej niż 5 min.
nuta: Pojawienie się przepuszczalności światła przez rurkę wskazuje na zakończenie lizy RBC.
- Wirować przy 600 x g przy RT przez 5 minut. Upewnij się, że osad ma biały kolor.
- Zawiesić osad w 10 ml autoklawowanego roztworu soli fizjologicznej buforowanej fosforanem (PBS, 137 mM NaCl, 2,7 mM KCl, 4,3 mM Na2HPO4 i 1,47 mM KH2PO4; pH 7,4) i odwirować jak w kroku 1.3.
- Wyrzuć supernatant, ponownie zawieś osad z 10 ml pożywki RPMI 1640 (dodatki: 10% płodowej surowicy cielęcej, 100 μg/ml penicyliny/streptomycyny, 0,25 μg/ml amfoterycyny B i 2 mM L-glutaminy), a następnie umieść komórki w 10-centymetrowym naczyniu hodowlanym (10 ml krwi na szalkę). Umieścić naczynie w inkubatorze o temperaturze 37 °C z 5% CO2 na 30 minut.
- Delikatnie zakręć naczyniem hodowlanym kilka razy i umieść pożywkę hodowlaną (komórki zawiesinowe) w plastikowych stożkowych probówkach o pojemności 15 ml. Wyrzuć przylegające komórki (głównie makrofagi) na szalkach hodowlanych.
- Wirować przy 600 x g w temperaturze pokojowej przez 5 minut. Odrzucić supernatant.
- Zawiesić osad z 1 ml pożywki RPMI 1640. Policz liczbę komórek za pomocą hemocytometru lub automatycznego licznika komórek.
nuta: Żywotność izolowanych leukocytów jest zwykle większa niż 90% przez wykluczenie błękitu trypanowego.
- Odwirować jak w kroku 1.7 i ponownie zawiesić komórki w ~ 200 μl zimnego buforu PBS (0,5% albuminy surowicy bydlęcej (BSA) i 2 mM EDTA) w stężeniu 5 - 10 x 106 komórek/ml.
- Dodać 5 μl biotynylowanego anty-ludzkiego koktajlu Ab specyficznego dla komórek krwi (dla negatywnej selekcji komórek B) na 106 komórek i inkubować na lodzie przez 30 min.
nuta: Anty-ludzki koktajl Ab powinien zawierać co najmniej Abs specyficzne dla CD2 (lub CD3), CD14 i CD16.
- Dodać 10-krotny nadmiar sterylnego PBS do komórek, odwirować przy 600 x g przez 5 minut i wyrzucić supernatant.
- Dodać równe ilości mikrogranulek sprzężonych ze streptawidyną (5 μl na10-6 komórek) do osadu i dokładnie wymieszać.
- Inkubować na lodzie przez 30 minut w plastikowej stożkowej probówce o pojemności 15 ml.
- Dodać 2 ml buforu PBS do probówki.
- Umieść probówkę w stojaku magnetycznym i inkubuj w temperaturze pokojowej przez 8 minut. Brązowe mikrokulki będą stopniowo przyczepiać się do ścianki rurki obok magnesu.
- Trzymając probówkę w stojaku magnetycznym, ostrożnie przenieś supernatant do nowej sterylnej probówki o pojemności 15 ml.
- Powtórz kroki od 1.14 do 1.16 i połącz dwa supernatanty, które zawierają nietknięte limfocyty B. Wyrzuć mikrogranulki.
- Wirować przy 600 x g w temperaturze pokojowej przez 5 minut. Odrzucić supernatant.
- Ponownie zawiesić granulkę w podłożu RPMI 1640 w celu przeprowadzenia dalszych eksperymentów.
nuta: Zazwyczaj można wyizolować 1 - 5 x 105 komórek B o czystości większej niż 95% z 10 ml krwi obwodowej.