Artykuł metodologiczny

Przygotowanie emulsji z adiuwantem antygenowym w celu wywołania autoimmunologicznego zapalenia mózgu i rdzenia

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Bäckström, B. T. Szybka, prosta i standaryzowana metoda homogenizacji do przygotowania emulsji antygenowych/adiuwantowych do wywoływania eksperymentalnego autoimmunologicznego zapalenia mózgu i rdzenia. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film demonstruje skuteczną technikę homogenizacji w celu wygenerowania emulsji antygenowo-adiuwantowej do wywołania eksperymentalnego autoimmunologicznego zapalenia mózgu i rdzenia (EAE) w modelu mysim. Emulsja zawiera autoantygen — glikoproteinę mielinową oligodendrocytów (MOG) — w fazie wodnej, otoczoną ciągłą fazą olejową zawierającą inaktywowane bakterie chorobotwórcze. Emulsja zapewnia przedłużone uwalnianie antygenów w celu przedłużenia odpowiedzi immunologicznej.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

UWAGA: Schematyczny przebieg metody jest opisany na rysunku 1.

1. Przygotowanie materiału

UWAGA: Przygotuj wszystkie odczynniki aseptycznie w sterylnym kapturze, a następnie podziel i przechowuj we wskazanej temperaturze. Odczynniki można przechowywać do 2 lat bez utraty ich działania.

  1. Przygotować CFA zawierające 20 mg/ml Mycobacterium tuberculosis zgodnie z poniższym opisem.
    1. Dodać 100 mg liofilizowanego M. tuberculosis H37RA (patrz tabela materiałów) i pięć stalowych kulek o średnicy 3,2 mm do probówki o pojemności 7 ml (patrz tabela materiałów). Potrząsaj probówką w homogenizatorze (patrz tabela materiałów) przez 60 s przy najwyższym ustawieniu prędkości (5 000 obr./min).
    2. Dodać 5 ml niekompletnego adiuwantu Freunda (IFA) do probówki i ponownie wstrząsać przez 60 s z najwyższą prędkością. Przenieść zawiesinę homogenizowanego M. tuberculosis z IFA (obecnie pod nazwą CFA) do świeżej probówki za pomocą pipety, pozostawiając kulki i przechowywać w temperaturze 4 °C do momentu użycia.
  2. Do liofilizowanego proszku peptydu MOG35-55 (patrz tabela materiałów) dodać ultraczystą wodę, aby uzyskać końcowe stężenie peptydu 10 mg/ml. Wysterylizuj roztwór, przepuszczając go przez filtr 0,2 μm. Przygotować 60 μl porcji i przechowywać w temperaturze -20 °C do momentu użycia.
    nuta: Peptyd MOG35-55 użyty w tym eksperymencie ma czystość ImmunoGrade (~70%), jest rozszczepiony TFA, łatwo rozpuszcza się w wodzie i zawiera C-końcowy amid (-NH2) w celu zwiększenia stabilności in vivo. Podwielokrotności peptydów nigdy nie były rozmrażane i ponownie zamrażane więcej niż dwa razy i były przechowywane w temperaturze -20 °C do czasu użycia.

2. Przygotowanie emulsji CFA/peptydowych

  1. Obliczyć ilość emulsji potrzebną do immunizacji. W tym standardowym protokole każda mysz otrzymuje 50 μg peptydu MOG35-55 i 300 μg M. tuberculosis rozproszone w adiuwantzie Freunda (CFA). Ilość każdego odczynnika (peptyd MOG35-55, PBS, CFA i IFA) wymagana do przygotowania emulsji może być obliczona za pomocą pliku uzupełniającego 1. Dodatkowe 20% wszystkich odczynników, aby zrekompensować niewielki ubytek emulsji, jest uwzględniane w obliczeniach.
    nuta: Dostępny w handlu zestaw emulsji (patrz tabela materiałów) użyty w tym badaniu składa się z tubki, nakrętki i tłoka w wysterylizowanej torebce. Każda tubka zestawu emulsji mieści maksymalnie 9,6 ml, co umożliwia przygotowanie 8 strzykawek o pojemności 1 ml wystarczających do zaszczepienia 40 myszy (lub 80 myszy w przypadku użycia 100 μl emulsji na zwierzę).
  2. Umieść zakręcaną rurkę (z dostępnego w sprzedaży zestawu emulsji) i odczynniki, które mają być użyte, na lodzie.
  3. Dodać składniki emulsji w następującej kolejności w objętościach obliczonych w kroku 2.1: PBS, następnie peptyd, następnie M. tuberculosis w CFA, a na końcu IFA.
  4. Mocno zamknij rurkę z nakrętką, kilkakrotnie ją dokręcając i poluzowując. Potrząsaj energicznie probówką ręcznie przez 5-10 s, aby wstępnie wymieszać odczynniki.
  5. Umieść probówkę w homogenizatorze wstrząsającym i zabezpiecz ją prętem. Ustaw prędkość na najwyższe ustawienie, a czas na 60 s. Po zakończeniu biegu umieść rurkę na lodzie na 3 minuty. Powtórz bieg jeszcze raz lub dwa razy z tymi samymi ustawieniami.
  6. Odwirować probówkę o masie 300 x g przez 1 minutę, aby usunąć uwięzione powietrze i zagęścić emulsję.
  7. Zdjąć nakrętkę z tubki, włożyć tłok do probówki i powoli wciskać go w dół, aż dotrze do górnej części emulsji. Zdejmij zatrzaskiwane zamknięcie na dole tuby, przekręcając je.
  8. Wyjąć tłok ze strzykawki do wstrzykiwań (1 ml; patrz Tabela materiałów). Dodać igłę (najlepiej 25-27 G) do strzykawki do wstrzykiwań.
  9. Przymocować tylny koniec strzykawki do przeznaczonego do tego celu zamka w dolnej części rurki i zablokować go krótkim przekręceniem.
  10. Przenieść emulsję z tubki do strzykawki iniekcyjnej, delikatnie naciskając tłok. Przerwać, gdy emulsja osiągnie podziałkę 0,15 ml strzykawki do wstrzykiwań.
  11. Oddzielić strzykawkę do wstrzykiwań od rurki i ostrożnie wprowadzić tłok, uważając, aby do strzykawki nie dostało się powietrze. Naciskać tłok tak długo, aż emulsja wyjdzie z igły.
    nuta: W tym momencie część emulsji można wykorzystać do kontroli jakości (patrz krok 3).
  12. Powtórz kroki 2.8-2.11 dla reszty emulsji obecnej w probówce.
    nuta: Aby zminimalizować marnotrawstwo drogich emulsji CFA/antygenowych, należy używać strzykawek o pojemności 1 ml. Można użyć innych strzykawek, które pasują do dedykowanego zamka na dnie tuby; Jednak może być konieczne przygotowanie większej objętości emulsji. Emulsja peptydowa CFA/MOG35-55 może być przechowywana w temperaturze 4 °C do 15 tygodni bez utraty zdolności indukowania EAE.

3. Kontrola jakości emulsji

  1. Test kroplowy: Dodaj małą kroplę emulsji do sterylnej stożkowej probówki o pojemności 50 ml wypełnionej 20 ml zimnej wody. Zamknij tubkę i potrząsaj nią ręcznie przez kilka sekund. Pojawienie się maleńkich, wyraźnych kropelek potwierdza tworzenie się emulsji typu woda w oleju.
  2. Zbadaj emulsję za pomocą mikroskopii z kontrastem fazowym.
    1. Aby przeanalizować wielkość cząstek wody w oleju, dodaj niewielką kroplę (2-3 μl) emulsji do szkiełka mikroskopowego, rozsmaruj ją szkiełkiem nakrywkowym, a następnie mocno dociśnij okrężnymi ruchami, aby spłaszczyć emulsję.
    2. Zbadaj rozmazaną emulsję pod mikroskopem z kontrastem fazowym (patrz tabela materiałów) z 400-krotnym powiększeniem i skoncentruj się na polu z monowarstwą emulsji. Upewnij się, że widoczne są małe, jednolite szaro-białe cząstki (rysunek 2A).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Schemat procesu przygotowania emulsji przy użyciu dostępnego w handlu zestawu do emulsji. Ten rysunek został ponownie wykorzystany z Topping et al za zgodą.

figure-results-2
Rysunek 2: Charakterystyka emulsji otrzymanych różnymi metodami. (A) Reprezentatywne obrazy z trzech różnych metod przygotowania: s...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1 ml strzykawka iniekcyjnaB. Brauna9166017V
1 ml strzykawka iniekcyjnaSigma-AldrichZ683531
Puste probówki o pojemności 7 ml z nakrętkamiBertin-InstrumentyP000944LYSK0A.0Probówka 7 ml
50 ml sterylnej probówki wirówkowejFisher Naukowy10788561Probówka 50 ml
Dyspergator, lekki olej mineralnySigma-AldrichZobacz materiał M8410Przechowuj w RT
Zestaw emulsjiBertin-InstrumentyD34200.10 szt.Zawiera probówkę, nasadkę i tłok
Niekompletny adiuwant FreundaSigma-AldrichZobacz materiał F5506Przechowywać w temperaturze +4 °C
Mycobacterium tuberculosis, H37RAFisher NaukowyDF3114-33-8Przechowywać w temperaturze +4 °C
Homogenizator Minilys-PersonalBertin-InstrumentyP000673-MLYS0-AHomogenizator wstrząsający
Peptyd MOG 35-55InnovagenN/a
Montanek ISA 51 VGSeppic (Seppic)36362ZAdiuwant olejowy zatwierdzony przez FDA
Filtry strzykawkowe Pall Acrodisc 0,2 μmFisher Naukowy17124381Sterylny filtr
PBS, wolny od Ca2+/Mg2+Thermo Fisher Naukowy14190144Pbs
Mikroskop z kontrastem fazowymOlympusBX40-B
Koraliki stalowe 3,2 mmFisher NaukowyNC0445832Autoklaw i przechowywanie w RT
powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

eksperymentalne autoimmunologiczne zapalenie m zgu i rdzeniaglikoproteina mieliny oligodendrocyt wtechnika homogenizacjiprzygotowanie emulsjiiniekcja podsk rnamikroskopia kontrastowacz stki woda olejadiuwant CFA IFAindukcja w modelu mysim

Powiązane artykuły