Artykuł metodologiczny

Metoda wywoływania stanu zapalnego powierzchni oka w modelu mysim

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Singh, J., et al. Indukcja zapalenia powierzchni oka i pobranie zaangażowanych tkanek. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film demonstruje metodę wywoływania zapalenia powierzchni oka i dysfunkcji gruczołów Meiboma w modelu mysim. Stymulacja układu odpornościowego myszy za pomocą immunogenu, a następnie ponowna stymulacja tym samym immunogenem sprzyja zapaleniu powierzchni oka, które powoduje zatkanie wydzielania gruczołów Meiboma przez aggNET wytwarzane przez neutrofile i prowadzi do zespołu suchego oka.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Indukcja mysiego zapalenia powierzchni oka

  1. Wykonaj przygotowanie immunogenowe do immunizacji.
    1. Przygotować immunogen świeżo w dniu immunizacji, mieszając albuminę jaja kurzego (OVA, 50 mg/ml) i toksynę krztuścową (100 μg/ml) w soli fizjologicznej i adiuwantowym wodorotlenku glinu (40 mg/ml) (patrz tabela materiałów) w proporcji 1:1.
      ostrożność: Wykonać otwieranie, rozpuszczenie i przygotowanie immunogenowe toksyny krztuścowej w laminarnej komorze bezpieczeństwa. Nosić odzież ochronną i unikać kontaktu ze skórą.
    2. Mieszaninę immunogenu i adiuwantu inkubować w temperaturze pokojowej przez 30 minut i załadować 100 μl do strzykawki o pojemności 1 ml.
    3. Wykonaj dootrzewnowe wstrzyknięcie roztworu immunogenu u myszy nieznieczulonej.
      1. Chwyć miękko mysz za ogon, chwytając siatkę klatki. Przytrzymaj mocno skórę pleców i szyi między kciukiem a palcem wskazującym, a ogon i kończyny dolne między palcem serdecznym a małym przymocuj do dłoni.
      2. Trzymaj nieruchomą mysz głową w dół.
      3. Wstrzyknąć 100 μl przygotowanego roztworu immunogenowego w prawy lub lewy kwadrant dolnej części jamy brzusznej.
  2. Wykonać prowokację powierzchni oka 2 tygodnie po szczepieniu.
    1. Znieczulić mysz izofluranem (2,5%).
    2. Nałóż 5 μl OVA (50 mg/ml) lub soli fizjologicznej (0,9% NaCl) na oko na oba oczy i poczekaj, aż kropla zostanie wchłonięta przez oko. Trwa to ~5 min.
    3. Powtarzaj procedurę 1x dziennie przez 7 dni.
      nuta: W ten sam sposób można zastosować miejscowe podawanie leków.

2. Zbiór wysięków z oczu

  1. Odzyskaj wysięki z oczu powstałe podczas fazy prowokacji, nakładając 50 μl sterylnego soli fizjologicznej na oko natychmiast po prowokacji.

3. Wycięcie tkanek powierzchni oka

  1. Dokładnie rozetnij powieki i gałkę oczną, wykonując poniższe czynności.
    1. Poddaj mysz eutanazji przez uduszenie CO2 i zwichnięcie szyjki macicy.
    2. Umieść mysz na równej powierzchni.
    3. Zdezynfekuj okolice oczodołu za pomocą wacika nasączonego 70% etanolem.
    4. Wykonaj nacięcie między uchem a zatoką zadoczodołową i wzdłuż powierzchni powyżej kości płaskonabłonkowej pionowo, przedłużając nacięcie poziomo poniżej dolnej powieki wzdłuż kości szczęki i powyżej górnej powieki wzdłuż kości czołowej. W ten sposób powstaje nacięcie wokół oka (ryc. 1).
    5. Ostrożnie przytrzymaj wypreparowaną tkankę wokół oka za pomocą zakrzywionych kleszczy i wyciągnij tkankę i gałkę oczną.
    6. Umieścić wycięte narządy w sterylnym PBS.
    7. Przyciąć nadmiar tkanki mięśniowej twarzy wokół wyciętych górnych powiek za pomocą skalpela i pod mikroskopem stereoskopowym.
  2. Zbierz spojówkę, wykonując poniższe czynności.
    1. Umieść górną powiekę na suchej szalce Petriego pod mikroskopem stereoskopowym.
    2. Za pomocą cienkiej pęsety i skalpela bardzo delikatnie oderwij białawo-śluzową warstwę z wewnętrznej powierzchni powieki.
  3. Następnie wypreparuj rogówkę, wykonując poniższe czynności.
    1. Umieść gałkę oczną na nowej suchej szalce Petriego na wierzchu suchego lodu na 3 minuty.
    2. Umieść szalkę Petriego na powierzchni ławki w stabilnej pozycji.
    3. Wykonaj małe nacięcie na granicy rogówki obok rąbka za pomocą cienkich, ostrych nożyczek.
    4. Przedłuż nacięcie skalpelem wokół gałki ocznej, oddzielając twardówkę od rogówki.
    5. Usuń resztki tęczówki i soczewki z tylnej strony rogówki, obficie spłukując roztworem soli fizjologicznej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rycina 1: Wycięcie tkanki twarzy otaczającej obszar oczodołu.Ślad nacięcia jest zaznaczony na czerwono. Pozwala to na wycięcie narządów oka i zbadanie wpływu i skutków różnych leków podawanych miejscowo na dodatkowe narządy oka, takie jak spojówka i rogówka.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
1x PBS (Biblioteka PBS)Gibco (firma Gibco)
Wodorotlenek glinuImject ałun AdjuwanttNumer telefonu 7716140 mg/ ml
Stężenie końcowe: in vivo: 1 mg/ 100 μL
Myszy C57Bl/6 w wieku 7–9 tygodniLaboratoria Charlesa Rivera
Zakrzywione kleszczeFST firmy Dumont SZWAJCARIA5/45 11251-35
Cienkie, ostre nożyczkiFST Stal nierdzewna, NiemcyNumer katalogowy: 15001-08
Laminarna szafa bezpieczeństwaHerasafe (Bezpieczny człowiek)
NaCl 0,9% (sól fizjologiczna)B.Braun
Albumina jaja kurzego (OVA)Endofit, Invivogen9006-59-110 mg/200 μl w roztworze soli fizjologicznej
Toksyna krztuścowaThermoFisher NaukowyPHZ117450 μg/ 500 μL w soli fizjologicznej
Stężenie końcowe: in vivo: 100 μg/ 100 μL
PetrydyjczykGreiner bio-oneNumer katalogowy: 628160
skalpelJednorazowy skalpel z piórNr 21 Stężenie końcowe: in vivo: 300 ng/ 100 μL
Mikroskop stereoskopowyZaissStemi508
Strzykawka (płukanie rogówki/tęczówki)BD Microlane27 G x 3/4 - Nr.20 0,4 x 19 mm
Strzykawka (i.p immunizacja)BD Microlane24 G1"-Nr 17, 055* 25 mm
powiedział: powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Immunogen InjectionOcular Surface ChallengeMeibomian Gland DysfunctionNeutrophil Extracellular TrapsaggNET FormationDry Eye DiseaseIntraperitoneal InjectionOvalbumin Challenge

Powiązane artykuły