1. Test zabijania K562
UWAGA: Komórki K562 powinny być hodowane w kulturze w temperaturze 37 °C i 5% CO2 z kompletną pożywką RPMI, aż osiągną 80% konfluencji przed testem.
- Przygotować 5 mM roztwór podstawowy estru sukcynimidylu karboksyfluoresceiny (CFSE), dodając do fiolki 18 μl DMSO.
- Rozcieńczyć WS-CM lub nikotynę w 96-dołkowej płytce za pomocą kompletnej pożywki RPMI do całkowitej objętości 100 μl/studzienkę, aby osiągnąć pożądane jednostki ekwitosyny nikotyny lub stężenia nikotyny dla każdej studzienki.
ostrożność: Nikotyna jest bardzo toksyczna i niebezpieczna dla środowiska.
- Dodać 100 μl PBMC do kompletnej pożywki RPMI o stężeniu 1,5 x 106 komórek/dołek. Całkowita objętość komórek z WS-CM lub nikotyną wyniesie 200 μl/studzienkę.
- Przykryć płytkę i inkubować przez 3 godziny w temperaturze 37 °C i 5% CO2 .
- Przemyć komórki K562 dodając 10 ml DPBS i odwirować przy 400 x g przez 8 minut w temperaturze pokojowej.
- Ponownie zawiesić komórki w 10 ml DPBS i policzyć komórki K562.
- Przygotować roztwór roboczy CFSE, dodając 1 μl roztworu podstawowego CFSE do 1 ml DPBS.
- Dodać 1 ml roztworu roboczego CFSE do 1 ml zawiesiny komórek K562 zawierającej 1-2 x10,7 komórek. Wirować i inkubować dokładnie przez 2 minuty w temperaturze pokojowej.
- Natychmiast dodaj 200 μl FBS. Wirować i inkubować dokładnie przez 2 minuty w temperaturze pokojowej.
- Dodać 10 ml kompletnej pożywki RPMI i odwirować probówkę o sile 400 x g przez 8 minut w temperaturze pokojowej.
- Usuń supernatant RPMI, rozbij osad i ponownie zawieś komórki za pomocą 10 ml kompletnego podłoża RPMI i policz komórki K562 znakowane CFSE.
- Przemyć PBMC przez odwirowanie płytki o sile 300 x g przez 3 minuty w temperaturze pokojowej. Odessać supernatant przez dekantację cieczy. Załóż pokrywę i przekręć spód płyty. Dodać 200 μl kompletnego podłoża RPMI i powtórzyć etap prania jeszcze raz.
- Dodać komórki K562 znakowane CFSE w stosunku 1:15 (100 000 K562s: 1,5 x 106 PBMC) do każdej studzienki próbki na płytce PBMC i dalej inkubować przez 5 godzin w temperaturze 37 °C i 5% CO2 .
- Przemyć mieszaninę komórek przez odwirowanie przy 300 x g przez 3 minuty w temperaturze pokojowej. Odessać supernatant odrzucając płyn. Załóż pokrywę i przekręć spód talerza.
- Dodać 200 μl bieżącego buforu i powtórzyć krok mycia opisany w kroku 14 jeszcze raz.
- Dodać 95 μl buforu bieżącego, a następnie 5 μl 7AAD do każdego dołka, aby uzyskać całkowitą objętość 100 μl/studzienkę. Inkubować płytkę w ciemności w temperaturze pokojowej przez 15 minut.
- Dodać 100 μl buforu do każdej studzienki i przenieść całą objętość zawiesiny komórek z każdej studzienki płytki do probówek zbiorczych i pobrać próbki na cytometrze przepływowym.
- Określ procent komórek 7AAD-dodatnich i CFSE za pomocą oprogramowania do analizy cytometrii przepływowej.