Artykuł metodologiczny

Test uwalniania dehydrogenazy mleczanowej w celu wykrycia infekcji Cryptococcus neoformans w makrofagach

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Ball, B., et al. Label-Free Quantitative Proteomics Workflow for Discovery-Driven Host-Pathogen Interactions. J. Vis. Exp. (2020)

W tym filmie demonstrujemy test cytotoksyczności do oceny infekcji Cryptococcus neoformans, grzyba chorobotwórczego, u makrofagów. Cytotoksyczność jest określana przez uwalnianie enzymu cytoplazmatycznej dehydrogenazy mleczanowej w wyniku lizy makrofagów spowodowanej zakażeniem Cryptococcus neoformans.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Weryfikacja infekcji

UWAGA: Korzystając z testu cytotoksyczności, można zmierzyć biegłość w infekcjach. Poniższy protokół podkreśli zastosowanie produktu cytotoksycznego do pomiaru uwalniania LDH (dehydrogenazy mleczanowej). Można również stosować inne produkty cytotoksyczności

  1. Przygotowanie zakażenia komórek makrofagów C. neoformans
    1. Przygotowanie komórek grzybów
      1. Używając bulionu glicerynowego, nałóż szczep C. neoformans typu dzikiego (H99) na płytkę agarową z dekstrozą peptonową z ekstraktem drożdżowym (YPD) w celu wyizolowania pojedynczych kolonii.
      2. Inkubować przez noc przez 16 godzin w temperaturze 37 °C w inkubatorze statycznym.
      3. Wybierz pojedynczą kolonię dzikiego szczepu C. neoformans i zahoduj ją w 5 ml bulionu YPD w luźno zamkniętej probówce o pojemności 10 ml. Występuj w poczwórnym powiększeniu.
      4. Inkubować przez noc przez 16 godzin w temperaturze 37 °C w inkubatorze z wytrząsaniem przy 200 obr./min.
      5. Następnego dnia subkultury każdej nocnej kultury w rozcieńczeniu 1:100 do 3 ml bulionu YPD.
      6. Zmierz wartości gęstości optycznej (OD600 nm) kultury grzybów, aby określić fazę środkową logarytmiczną. W zależności od spektrofotometru, szczep C. neoformans typu dzikiego osiąga fazę środkową zwykle po 6 do 8 godzinach inkubacji w YPD z ogólnymi wartościami OD600 nm w zakresie od 1,0 do 1,5.
      7. Gdy komórki osiągną środkową fazę logarytmiczną, weź 10 μl porcji zawiesiny komórek grzybów do czystej probówki mikrowirówkowej o pojemności 1,5 ml i rozcieńcz 1:100 w sterylnym 1x soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS). Policz liczbę komórek za pomocą hemocytometru.
      8. Zebrać i odwirować komórki w ilości 1 500 x g przez 10 minut, delikatnie przemyć osad sterylnym PBS o temperaturze pokojowej i powtórzyć w sumie trzy płukania.
      9. Ponownie zawiesić komórki w pożywce do hodowli komórkowych bez antybiotyków, aby osiągnąć stężenie 1,2 x 108 komórek/ml.
    2. Przygotowanie komórek makrofagów
      1. Wizualizuj każdą studzienkę w płytce 6-dołkowej, aby upewnić się, że komórki osiągnęły 70-80% zbieżności. Alternatywnie można zmierzyć komórki, aby uzyskać ok. 1,2 x 106 komórek makrofagów na studzienkę.
      2. Podgrzej pożywkę uzupełnioną antybiotykiem do temperatury 37 °C przed rozpoczęciem hodowli komórkowej. Upewnij się, że środowisko pracy jest wysterylizowane przed pracami z hodowlą komórkową. Wizualizuj komórki za pomocą mikroskopu świetlnego, aby upewnić się, że komórki przylegają i są zdrowe.
      3. Usunąć pożywkę do hodowli komórkowych z naczynia za pomocą pipety serologicznej lub aspiratora próżniowego.
      4. Delikatnie dodaj 5-7 ml sterylnego PBS (soli fizjologicznej buforowanej fosforanami) o temperaturze pokojowej do naczynia o wymiarach 60 x 15 mm.
      5. Delikatnie przechyl naczynie, aby umyć przylegające komórki.
    3. Kohodowla C. neoformans i komórek makrofagów
      1. Dodać 1 ml zawieszonych komórek C. neoformans do 4 studzienek zawierających komórki makrofagów.
        nuta: Wymagana liczba płytek będzie musiała zostać obliczona przed rozpoczęciem eksperymentu. Dodaj 1 ml pożywki wolnej od antybiotyków do pustych studzienek.
      2. Pozostawić komórki do inkubacji w temperaturze 37 °C z 5% CO2 przez 3 godziny.
      3. Usunąć pożywkę do hodowli komórkowych z płytki za pomocą pipety serologicznej lub aspiratora próżniowego.
      4. Delikatnie dodaj 1 ml sterylnego PBS o temperaturze pokojowej.
      5. Delikatnie przechyl płytkę, aby umyć nieprzyłączone lub niefagocytozowane zewnątrzkomórkowe komórki C. neoformans.
      6. Dodaj 1 ml pożywki wolnej od antybiotyków do każdego dołka w płytce 6-dołkowej.
      7. Inkubować komórki w temperaturze 37 °C z 5% CO2 .
    4. W wybranych punktach czasowych (np. 1, 3, 6, 12 i 24 godziny) należy pobrać supernatant do pomiaru uwalniania LDH zgodnie z zaleceniami producenta.
    5. W tym samym czasie niezakażone komórki makrofagów zostaną poddane lizie do określonej wartości w celu uzyskania maksymalnej cytotoksyczności.
    6. Obliczyć cytotoksyczność w następujący sposób:
      figure-protocol-1

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
100 mM Tris-HCl, pH 8,5Fisher NaukowyZobacz materiał BP152-1Utrzymywać w temperaturze 4°C
Talerz 60 x 15 mm, Nunclon DeltaThermoFisher Naukowy174888
6-dołkowa płytka do hodowli komórkowejThermoFisher Naukowy140675
Stożkowe probówki sokoła (15 ml)Fisher Naukowy05-539-12
Hrabina II Automatyczny licznik komórekThermoFisher NaukowyAMQAX1000Nie jest to konieczne, hemocytometr może być używany jako alternatywa.
Test cytotoksyczności nieradioaktywnej CytoTox 96Preparat PromegaSilnik G1780
DMEM, wysoki poziom glukozy, suplement GlutaMAXThermoFisher Naukowy10566016
Płodowa surowica bydlęca (FBS)ThermoFisher Naukowy12483020Podgrzewać dezaktywować przez inkubację w temperaturze 60°C przez 30 minut. Przygotować 50 ml porcji i błyskawicznie zamrozić. Rozmrozić przed przygotowaniem podłoża
HemocytometrFirma VWRLata 15170-208
HEPESYSigma AldrichH3375Przygotować 40 mM HEPES/8 M mocznika w roztworze podstawowym luzem, błyskawicznie zamrozić, przechowywać w temperaturze -20°C do momentu użycia. Wyrzuć po każdym użyciu (nie zamrażaj i nie rozmrażaj wielokrotnie).
L-glutaminaThermoFisher Naukowy25030081Może być podwielokrotny i zamrożony do przechowywania. Rozmrozić przed przygotowaniem pożywki.
MikrowirówkaEppendorf13864457
Penicylina : Streptomycyna 10k/10kFirma VWRCA12001-692Może być podwielokrotny i zamrożony do przechowywania. Rozmrozić przed przygotowaniem pożywki.
sól fizjologiczna buforowana fosforanamiFirma VWRCA12001-676Zakup nie jest wymagany. Można również przygotować PBS, ale przed użyciem należy przeprowadzić sterylną filtrację.
Pipeta jednorazowa serologiczna (10 ml)Fisher Naukowy13-678-11E
Pipeta serologiczna jednorazowego (25 mL) BasixFisher Naukowy14955235
Mieszanina trypsyny i proteazy Lys-C, stopień stwardnienia rozsianegoprzebijaćA40007Utrzymywać w temperaturze -20 °C.
mocznikSigma AldrichU1250-1KGPrzygotować 40 mM HEPES/8 M mocznika w roztworze podstawowym luzem, zamrozić błyskawicznie, przechowywać w temperaturze -20 °C do momentu użycia. Wyrzuć po każdym użyciu (nie zamrażaj i nie rozmrażaj wielokrotnie).
Rosół z dekstrozy peptonowej z ekstraktem drożdżowymBD DifcoZobacz materiał BM20
powiedział: powiedział: powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Oznaczenie dehydrogenazy mleczanowejinfekcja makrofag wpomiar cytotoksyczno ciuwalnianie LDHtworzenie fagolizosom wpersistencja grzyb wanaliza za pomoc czytnika p ytekpo ywki bezantybiotykowepobieranie supernatantu

Powiązane artykuły