Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Technika wytwarzania cząstek podobnych do wirusa grypy przez system ssaków

1.2K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Arevalo, M. T., et al.Ekspresja i oczyszczanie cząsteczek wirusopodobnych do szczepienia. J. Vis. Exp. (2016).

Ten film pokazuje generowanie cząsteczek wirusopodobnych do grypy (VLP) w organizmie ssaków. Po ekspresji trzech eukariotycznych wektorów ekspresyjnych - kodujących różne białka strukturalne wirusa - w odpowiednich komórkach gospodarza ssaków, wyrażone białka wirusowe samoorganizują się w VLP na błonie plazmatycznej gospodarza i uwalniają się poprzez pączkowanie z powierzchni komórki.

Protokół

1. System ekspresji ssaków do generowania wirusa grypy H3N2 VLP

  1. Subklonowane wirusowe glikoproteiny strukturalne hemaglutynina (HA), neuraminidaza (NA) i ludzki wirus niedoboru odporności (HIV) Gag (antygen specyficzny dla grupy) p55 do eukariotycznych wektorów ekspresyjnych, takich jak wcześniej opisany pTR600.
  2. Amplifikować DNA w chemicznie kompetentnych Escherichia coli (np. DH5α) i wyizolować plazmid klasy transfekcyjnej za pomocą zestawu do oczyszczania plazmidu zgodnie z instrukcjami producenta. Ilość DNA zależy od plonu i potrzeb użytkownika.
  3. Utrzymać linię komórkową ssaków, 293T, w pożywce wzrostowej zawierającej 10% płodowej surowicy bydlęcej (FBS) w temperaturze 37 °C z 5% CO2 w wilgotnym inkubatorze.
  4. Hodować komórki w taki sposób, aby kolba do hodowli tkankowej T-150 zawierała 45-75 x 106 komórek na kolbę, tak aby kolba uzyskała całkowite przyleganie komórek i 85-95% zbiegu komórek do następnego dnia. Sprawdź komórki pod mikroskopem pod kątem pożądanej konfluencji.
    nuta: Zazwyczaj zaleca się wysoką gęstość komórek w celu uzyskania optymalnej ekspresji białka przy minimalnej cytotoksyczności przy użyciu komercyjnych odczynników do transfekcji, jednak nadmierna konfluencja może powodować gromadzenie się produktów ubocznych odpadów komórkowych i zmniejszać żywotność komórek.
  5. W dniu transfekcji należy przygotować mieszaninę liposomu i DNA zgodnie z zaleceniami producenta i dokonać transfekcji komórek DNA o składzie DNA 1:1:2 HA:NA:Gag o łącznej ilości DNA 40 μg na kolbę T-150. Rozcieńczyć DNA i roztwory liposomów w pożywkach do transfekcji bez surowicy bez antybiotyków, tak aby każda kolba zawierała całkowitą objętość 20-30 ml.
    nuta: Stosunek konstruktów genów może wymagać optymalizacji przez użytkownika. Chociaż nie wykazano tego tutaj, podobną procedurę transfekcji przeprowadzono z użyciem syncytialnego wirusa oddechowego (RSV) F i HIV Gag w stosunku 1:1. W przypadku plazmidów jednoekspresyjnych DENV i CHIKV w celu uzyskania optymalnej ekspresji stosuje się łącznie 20 μg DNA na kolbę T-150. Proporcje odczynników DNA:transfekcja są zoptymalizowane pod kątem użytkownika. Stosować zalecaną pożywkę do transfekcji w oparciu o metodę transfekcji, tj. polikationowe transfekcje lipidowe zalecają zmniejszenie lub brak płodowej surowicy bydlęcej, dlatego pożywki mogą być uzupełnione hormonami wzrostu i pierwiastkami śladowymi w celu wsparcia wzrostu przy braku surowicy.
  6. Kolby należy przywrócić do temperatury 37 °C za pomocą inkubatora o stężeniu 5% CO2 . Na objętość 200 ml należy użyć 9 kolb T-150. Komórki są utrzymywane w pożywce do hodowli transfekcyjnej do dnia zbioru VLP.
  7. Zebrać supernatant kultury z komórek po 72-96 godzinach po transfekcji w zależności od antygenu lub gdy żywotność komórek spadła do 70-80%, zgodnie z oszacowaniem kontroli mikroskopowej. Przenieść supernatant do stożkowych probówek o pojemności 50 ml i odwirować komórki w temperaturze 500 × g przez 5 minut w temperaturze 4 °C w celu osadzenia szczątków komórkowych.
    Uwaga: Zastąpienie 3-dniowego supernatantu świeżym, wstępnie ogrzanym, wolnym od surowicy podłożem do transfekcji na przylegające komórki spowoduje uzyskanie drugiej partii VLP o podobnej lub nieznacznie zmniejszonej wydajności i powinno zostać zoptymalizowane przez użytkownika.
  8. Zebrać supernatant w puli i przefiltrować przez membranę porową 0,22 μm przed sedymentacją za pomocą ultrawirowania.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zestaw Maxi PlazmidQiagen powiedział:Numer katalogowy: 12163
DMEM (DMEM)Komórka10-013
LipofektaminaTechnologie życioweL3000075Lipofektamina 2000, Lipofektamina 3000
Opti-MEM ITechnologie życiowe31985062
Mieszadło wielopunktowe Cimarec I 6ThermoFisher Naukowy50094596
Probówki ultrawirówkowe PolyclearSetonZobacz materiał 7025
Górna część filtra próżniowego 0,22 μm (500 ml)Nalgene powiedział:569-0020
glicerolSigmaZobacz materiał G5516
TGL

Tagi

System ekspresyjny ssak wHemaglutynina Neuraminidaza Gagtransfekcja liposomalnasamomonta VLPp czkowanie z b ony plazmatycznejpobieranie supernatantufiltracja 022 mikronaprotok transfekcji DNAoczyszczanie cz stek przypominaj cych wirusy