$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
UWAGA: Wszystkie prace opisane poniżej mają być wykonywane w laboratorium CL2 w komorze bezpieczeństwa mikrobiologicznego klasy 2 (MSC) zgodnie z lokalnymi wytycznymi dotyczącymi zdrowia i bezpieczeństwa.
1. Przygotowanie M. bovis BCG lux do infekcji
- Rozmrozić zamrożony 1,2 ml glicerolu (15%) zapasu M. bovis BCG lux, szczepu szczepionki montrealskiej przekształconego za pomocą plazmidu wahadłowego pSMT1 przenoszącego geny luxAB z Vibrio harveyi kodujące enzym lucyferazy.
- Zaszczepić 15 ml bulionu Middlebrook 7H9 zawierającego 0,2% glicerolu, 10% albuminy, dekstrozę, wzbogacenie katalazą (ADC) i 50 μg/ml higromycyny rozmrożoną 1,2 ml porcji BCG lux, w oznakowanej kolbie Erlenmeyera o pojemności 250 ml.
- Umieścić kolbę w szczelnie zamkniętym pojemniku zapewniającym bezpieczeństwo biologiczne i inkubować w temperaturze 37 °C w inkubatorze z wytrząsarką orbitalną z prędkością 220 obr./min przez 72 godziny (lub do momentu, gdy kultura osiągnie środkową fazę wzrostu).
- Sprawdź wzrost kultury BCG lux, przygotowując rozcieńczenia kultury w stosunku 1:10 w probówkach luminometru przy użyciu soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS, pH 7,4, 0,01 M bufor fosforanowy, 0,0027 M chlorek potasu i 0,137 M chlorek sodu) w dwóch egzemplarzach. Wirować i załadować rurki luminometru do luminometru i zmierzyć bioluminescencję (względną jednostkę światła [RLU]/ml) przy użyciu aldehydu n-decylowego jako podłoża (1% v/v w absolutnym etanolu).
nuta: Stosunek RLU do jednostek tworzących kolonię (CFU) został wcześniej określony na 3:1, gdy BCG lux był hodowany in vitro w bulionie Middlebrook 7H9.
- Odwirować kulturę przy 2,175 x g przez 10 minut w temperaturze pokojowej w celu osadzenia komórek i odrzucenia supernatantu do odpowiedniego środka dezynfekującego o znanej aktywności prątkobójczej. Wszystkie odpady z kultur należy zutylizować środkami dezynfekującymi odpowiednimi dla prątków zgodnie z lokalnymi wytycznymi.
- Umyj osad komórkowy dwukrotnie w PBS zawierającym 0,05% polisorbatu 80 (PBS-T), aby zapobiec zbrylaniu się bakterii.
- Po ostatnim płukaniu zdekantować supernatant odpadowy, ponownie zawiesić osad komórek mykobakteryjnych w PBS-T i rozcieńczyć zawiesinę prątków do pożądanej gęstości komórek za pomocą pomiarów RLU.
- Przygotować dziesięciokrotne seryjne rozcieńczenia inokulum w 24-dołkowych płytkach przy użyciu PBS-T. Umieść 10 μl na płytkach agarowych Middlebrook 7H11 (0,5% glicerolu, 50 μg/ml higromycyny, 10% kwasu oleinowego, albuminy, dekstrozy, katalazy [OADC]) w dwóch egzemplarzach, aby wyliczyć liczbę CFU inokulum.