$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wszystkie procedury związane z pobieraniem próbek zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytutu IRB.
1. Makrofagi z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego (BAL)
- Użyj BAL, aby uzyskać makrofagi płucne u (1) ludzi za pomocą bronchoskopii i (2) myszy za pomocą aspiracji dotchawiczej.
nuta: Przejęcie makrofagów na ogół powoduje pewną aktywację tych komórek. Makrofagi uzyskuje się od pacjentów, którzy wymagają bronchoskopii w celu zbadania potencjalnego problemu medycznego i nie wszyscy uczestnicy mogą nadawać się do analizy pułapek zewnątrzkomórkowych makrofagów lub MET (będzie to musiało zostać określone dla każdego indywidualnego projektu).
- Weź roztwór BAL i odwiruj go (500 x g przez 10 min), aby powstał osad, przemyć dwukrotnie pożywką hodowlaną (Roswell Park Memorial Institute Medium (RPMI) z 5% płodową surowicą cielęcą i 1% L-glutaminą) w temperaturze pokojowej, a następnie rozcieńczyć komórki w 4 ml pożywki hodowlanej.
- Jeśli to konieczne, poproś o formalne zliczenie różnicowe; większość komórek (zwykle >80%) będzie makrofagami.
nuta: Zazwyczaj będzie to wykonywane przez kliniczną usługę histologiczną z wykorzystaniem morfologicznego wyglądu różnych typów komórek.
- Przeprowadzić żywotną liczbę komórek makrofagów w roztworze BAL, używając wykluczenia błękitu trypanowego i hemocytometru.
nuta: Roztwór BAL uzyskuje się od ludzi i myszy, jak wspomniano w kroku 1.1.
- Dodać 1 - 4 x 105 makrofagów do 24-dołkowych płytek na szkiełkach nakrywkowych w 500 μl pożywki hodowlanej na basenie i pozostawić na noc w temperaturze 37°C; komórki przylgną do szkiełek nakrywkowych. W przypadku próbek pobranych od ludzi należy dodać antybiotyki (np. penicylinę i streptomycynę, 104 U/ml), aby zapobiec skażeniu bakteryjnemu.
2. Znakowanie immunofluorescencyjne/mikroskopia makrofagów BAL
UWAGA: Komórki są przyklejone do szkiełek nakrywkowych, jak wspomniano powyżej.
- Usunąć pożywkę hodowlaną i raz przemyć komórki solą fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS). Utrwalić komórki w 2% utrwalaczu paraformaldehydu/periodatu/lizyny (PLP) przez 10 min.
- Umyj komórki krótko w PBS, a następnie przepuszczalność w 0,2% Tween 20 w PBS przez 20 minut.
- Blokuj komórki z 10% surowicą kurczaka w 5% albuminie surowicy bydlęcej (BSA) rozcieńczonej w PBS przez 30 min.
- Inkubować z pierwszorzędowymi i kontrolnymi przeciwciałami izotypowymi przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej w stężeniach 1:100 (bardziej szczegółowe informacje podano w tabeli materiałów) w temperaturze 37 °C.
nuta: W przypadku próbek BAL zwykle nie jest wymagany specyficzny marker makrofagów.
- Po dodaniu przeciwciał pierwszorzędowych umyć komórki w PBS i dalej inkubować z odpowiednimi przeciwciałami drugorzędowymi przez 40 minut w temperaturze pokojowej.
- Umyj sekcje w PBS i zamontuj za pomocą medium montażowego na bazie DAPI w celu wizualizacji za pomocą mikroskopu konfokalnego (jak wspomniano powyżej) przy wzbudzeniach laserowych 405, 488, 561 i 647 nm oraz obiektywie olejowym 40X, 1.0 NA.