Method Article

Wizualizacja pułapek zewnątrzkomórkowych w makrofagach z ludzkich płynów płucnych oskrzelowo-pęcherzykowych

July 8th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Sharma, R. et al., Wizualizacja pułapek zewnątrzkomórkowych makrofagów za pomocą mikroskopii konfokalnej. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film demonstruje znakowanie immunologiczne pułapek zewnątrzkomórkowych makrofagów, MET, w makrofagach oskrzelowo-pęcherzykowych z płynu z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego, oraz ich wizualizację za pomocą mikroskopu konfokalnego.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury związane z pobieraniem próbek zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytutu IRB.

1. Makrofagi z płukania oskrzelowo-pęcherzykowego (BAL)

  1. Użyj BAL, aby uzyskać makrofagi płucne u (1) ludzi za pomocą bronchoskopii i (2) myszy za pomocą aspiracji dotchawiczej.
    nuta: Przejęcie makrofagów na ogół powoduje pewną aktywację tych komórek. Makrofagi uzyskuje się od pacjentów, którzy wymagają bronchoskopii w celu zbadania potencjalnego problemu medycznego i nie wszyscy uczestnicy mogą nadawać się do analizy pułapek zewnątrzkomórkowych makrofagów lub MET (będzie to musiało zostać określone dla każdego indywidualnego projektu).
    1. Weź roztwór BAL i odwiruj go (500 x g przez 10 min), aby powstał osad, przemyć dwukrotnie pożywką hodowlaną (Roswell Park Memorial Institute Medium (RPMI) z 5% płodową surowicą cielęcą i 1% L-glutaminą) w temperaturze pokojowej, a następnie rozcieńczyć komórki w 4 ml pożywki hodowlanej.
    2. Jeśli to konieczne, poproś o formalne zliczenie różnicowe; większość komórek (zwykle >80%) będzie makrofagami.
      nuta: Zazwyczaj będzie to wykonywane przez kliniczną usługę histologiczną z wykorzystaniem morfologicznego wyglądu różnych typów komórek.
    3. Przeprowadzić żywotną liczbę komórek makrofagów w roztworze BAL, używając wykluczenia błękitu trypanowego i hemocytometru.
      nuta: Roztwór BAL uzyskuje się od ludzi i myszy, jak wspomniano w kroku 1.1.
    4. Dodać 1 - 4 x 105 makrofagów do 24-dołkowych płytek na szkiełkach nakrywkowych w 500 μl pożywki hodowlanej na basenie i pozostawić na noc w temperaturze 37°C; komórki przylgną do szkiełek nakrywkowych. W przypadku próbek pobranych od ludzi należy dodać antybiotyki (np. penicylinę i streptomycynę, 104 U/ml), aby zapobiec skażeniu bakteryjnemu.

2. Znakowanie immunofluorescencyjne/mikroskopia makrofagów BAL

UWAGA: Komórki są przyklejone do szkiełek nakrywkowych, jak wspomniano powyżej.

  1. Usunąć pożywkę hodowlaną i raz przemyć komórki solą fizjologiczną buforowaną fosforanami (PBS). Utrwalić komórki w 2% utrwalaczu paraformaldehydu/periodatu/lizyny (PLP) przez 10 min.
  2. Umyj komórki krótko w PBS, a następnie przepuszczalność w 0,2% Tween 20 w PBS przez 20 minut.
  3. Blokuj komórki z 10% surowicą kurczaka w 5% albuminie surowicy bydlęcej (BSA) rozcieńczonej w PBS przez 30 min.
  4. Inkubować z pierwszorzędowymi i kontrolnymi przeciwciałami izotypowymi przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej w stężeniach 1:100 (bardziej szczegółowe informacje podano w tabeli materiałów) w temperaturze 37 °C.
    nuta: W przypadku próbek BAL zwykle nie jest wymagany specyficzny marker makrofagów.
  5. Po dodaniu przeciwciał pierwszorzędowych umyć komórki w PBS i dalej inkubować z odpowiednimi przeciwciałami drugorzędowymi przez 40 minut w temperaturze pokojowej.
  6. Umyj sekcje w PBS i zamontuj za pomocą medium montażowego na bazie DAPI w celu wizualizacji za pomocą mikroskopu konfokalnego (jak wspomniano powyżej) przy wzbudzeniach laserowych 405, 488, 561 i 647 nm oraz obiektywie olejowym 40X, 1.0 NA.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
Próbki ludzkie: Przeciwciała pierwszorzędowe
Królik anty-ludzki H3Cit (Cytrulina R26)Księga AbcamZobacz materiał AB510310 μg/ml
Mysz anty-ludzka MMP9Novus BiologicznyAB1199061:200 wodobrzusze, bez podanego stężenia
Królik anty-ludzki PADI2/PAD2Księga AbcamAB164787 μg/ml
Mysz anty-ludzka PADI4/PAD4Księga AbcamAB12808610,1 μg/ml
Przeciwciała drugorzędowe
Kurczak anty-królik AF 488/Technologie życioweA-21441
Kurczak anty-królik AF 594Technologie życioweA-21442
Kurczak anty-kozioł AF 594Technologie życioweA-21468
Kurczak anty-myszy AF488Technologie życioweA-21200
Programy komputerowe
ImarisPłaszczyzna bitowa
Obraz JNih
Do uśrednienia intensywności fluorforów można użyć standardowej aplikacji biurowej, takiej jak Microsoft Excel
Mikroskopy
C1 Konfokalny mikroskop skaningowyNikon
FV1200 Konfokalny mikroskop skaningowyOlympus
Próbki ludzkiego BAL z pracowni bronchoskopii w Monash Medical Center
media
Prędkość obrotowaSigma-AldrichPrzekaźnik Przemysłowy R8758
Surowica cielęca płoduSigma-AldrichF0926
L-glutaminaSigma-AldrichKlasa G7513
Inne odczynniki
utrwalacz paraformaldehydu/periodatu/lizyny (PLP)Sigma-AldrichNumer katalogowy: 27387
Naturalna formalinaSigma-AldrichNumer katalogowy: 42904
Szkiełka nakrywkowe 12 mlSigma-AldrichZobacz materiał S1815
Szkiełka nakrywkowe 60 x 24 mlSigma-AldrichZobacz materiał C6875
powiedział: powiedział:

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Macrophage Extracellular TrapsConfocal MicroscopyCitrullinated HistonesPADs DetectionMatrix MetalloproteinasesBronchoalveolar LavageCell FixationImmunofluorescence StainingDAPI StainingFluorescence Microscopy

Related Articles