Artykuł metodologiczny

Wkraplanie dooskrzelowe Streptococcus pneumoniae w immunokompetentnych modelach gryzoni

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Hoover, J. L., et al., Solidny model zapalenia płuc u immunokompetentnych gryzoni do oceny skuteczności przeciwbakteryjnej przeciwko S. pneumoniae, H. influenzae, K. pneumoniae, P. aeruginosa lub A. baumannii. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film pokazuje proces powstawania infekcji płuc u immunokompetentnego modelu gryzoni poprzez intubację i instalację zawiesin bakteryjnych w płatach płuc. Model ten umożliwia badania skuteczności przeciwbakteryjnej u zwierząt immunokompetentnych.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Znieczulanie, intubacja i szczepienie zwierząt

UWAGA: Zalecane są wolne od specyficznych patogenów (SPF), immunokompetentne samce szczurów Sprague-Dawley o wadze 100 - 120 g. Zapewnij wszystkim zwierzętom jedzenie i wodę ad libitum i trzymaj je społecznie na zrębkach drzewnych lub innej chłonnej ściółce ze standardowymi 12-godzinnymi cyklami światła i ciemności.

  1. Przed przeprowadzeniem jakichkolwiek eksperymentów należy zaopatrzyć się i wysterylizować metalową kaniulę i rurkę polietylenową o rozmiarze odpowiednim dla gatunku zwierzęcia. Zaopatrz się w sterylne jednorazowe strzykawki o pojemności 1 ml i sterylne jednorazowe igły o rozmiarze 25.
    ostrożność: Strzykawki i igły należy zawsze wyrzucać do pojemnika na ostre przedmioty.
    1. W przypadku szczurów kup lub wyprodukuj metalową kaniulę o długości około 12 cm, średnicy wewnętrznej 0,9 - 1,0 mm i średnicy zewnętrznej 1,0 - 1,2 mm i wygiętej do kąta około 45° na jednym końcu. Wytnij rurkę polietylenową o długości od 11 do 12 cali o średnicy wewnętrznej 0.4 mm i średnicy zewnętrznej 0.8 mm. (Patrz rysunek 1A.)
    2. Umieść metalową kaniulę w szklanej, zakręcanej probówce i autoklaw standardowymi metodami w celu sterylizacji. Namocz i przechowuj pocięte odcinki rurki polietylenowej w zakrytej zlewce zawierającej alkohol.
  2. Przygotuj powierzchnię roboczą i urządzenie do intubacji.
    1. Umieść czystą jednorazową matę na powierzchni roboczej, w pobliżu łaźni wodnej. Przenieś metalową kaniulę w szklanej rurce do przechowywania na tę powierzchnię. Zdejmij nasadkę z rurki do przechowywania i wsuń koniec "uchwytu" kaniuli do otwartego końca tubki.
    2. Za pomocą sterylnych kleszczy wyjmij jeden odcinek rurki polietylenowej ze zlewki i włóż ją przez wnętrze sterylnej metalowej kaniuli, upewniając się, że porusza się swobodnie. Załóż sterylną jednorazową igłę o rozmiarze 25 (dla szczurów) na wolnym końcu rurki polietylenowej, wsuwając igłę na kilka mm w rurkę. (Patrz rysunek 1A dla szczura).
    3. Umieść znaki prowadzące zarówno na metalowej kaniuli, jak i rurki polietylenowej, aby wskazać głębokość wprowadzenia u zwierzęcia, postępując zgodnie z opisaną poniżej procedurą intubacji na pojedynczym zwierzęciu poddanym eutanazji. Otwórz jamę klatki piersiowej w celu obserwacji, a następnie odpowiednio umieść metalową kaniulę i odpowiednio przesuń rurkę polietylenową. Za pomocą nieusuwalnego długopisu zaznacz metalową kaniulę w miejscu, w którym styka się z pyskiem zwierzęcia, oraz rurkę polietylenową w miejscu, w którym styka się z górną częścią metalowej kaniuli, aby pomóc w prawidłowym umieszczeniu w pozostałych zwierzętach.
  3. W dygestorium (lub przy użyciu odpowiedniego systemu oczyszczania) należy znieczulić do 6 zwierząt jednocześnie w zamkniętej komorze zasilanej ≤5% izofluranem w 1,5 l/min tlenu, aż do zahamowania odruchu wymiotnego (około 1 min).
    nuta: Przed przeprowadzeniem jakichkolwiek doświadczeń należy ustalić bezpieczną dawkę i czas ekspozycji na izofluran w szczególnych stosowanych warunkach (np. wielkość/rodzaj komory i wielkość/gatunek/szczep zwierzęcia), aby zapobiec niezamierzonemu narażeniu letalnemu.
  4. Napełnij sterylną jednorazową strzykawkę o pojemności 1 ml (dla szczurów) sterylnym roztworem soli fizjologicznej, umieszczając sterylną końcówkę w soli fizjologicznej i pociągając ją z powrotem za tłok. Przymocować strzykawkę do igły umieszczonej na rurki polietylenowej i przepłukać całą objętość soli fizjologicznej przez rurkę, aż strzykawka zostanie opróżniona.
  5. Napełnić strzykawkę inokulum na bazie agaru z pojemnika w łaźni wodnej i przepłukać agar przez rurkę, aż rurka zostanie zalana (np. całkowicie wypełniona agarem).
    1. W przypadku szczurów wyjąć igłę o rozmiarze 25 (zamontowaną na rurki polietylenowej) z jednorazowej strzykawki. Wyrzuć zużytą strzykawkę do pojemnika na ostre przedmioty. Napełnij nową, sterylną jednorazową strzykawkę o pojemności 1 ml inokulum na bazie agaru z pojemnika w łaźni wodnej, umieszczając sterylną końcówkę w inokulum i odciągając tłok. Ponownie założyć igłę (zamontowaną na rurki polietylenowej) i przepłukać agar przez rurkę, naciskając tłok tylko do momentu, gdy rurka zostanie całkowicie wypełniona agarem.
  6. Usuń jedno zwierzę z komory anestezjologicznej. Ułóż zwierzę w pozycji leżącej na macie jednorazowego użytku z głową po prawej stronie i ogonem po lewej, jak pokazano na rysunku 1C.
  7. Za pomocą urządzenia do intubacji (tj. metalowej kaniuli wyposażonej w rurkę polietylenową) należy zaintubować zwierzę i wprowadzić kaniulę do dużego płata lewego płuca (patrz rysunek 1D).
    1. Włóż wolny koniec metalowej kaniuli do pyska zwierzęcia. Obróć kaniulę tak, aby wolny koniec był ustawiony pod kątem do góry i delikatnie wsuń ją do tchawicy, ostrożnie omijając struktury krtani lekkim ruchem skręcającym. Potwierdź wprowadzenie do tchawicy, a nie do przełyku, delikatnie przesuwając kaniulę lekko do przodu i do tyłu kilka razy, jednocześnie dotykając pierścieni tchawicy lewym palcem wskazującym, jak pokazano na rysunku 1C.
    2. Gdy kaniula dotrze do rozwidlenia, w którym tchawica rozdziela się na lewe i prawe oskrzel, wykonaj lekki ruch skręcający w kierunku lewej strony zwierzęcia, aby upewnić się, że kaniula została wprowadzona do lewego oskrzela. Przesuń metalową kaniulę do momentu, aż koniec znajdzie się w połowie lub trzech czwartych w dół lewego płuca, używając wcześniej umieszczonego znacznika prowadzącego, aby potwierdzić, że osiągnięto odpowiednią głębokość.
    3. Po założeniu metalowej kaniuli przesuń rurkę polietylenową o kilka mm. Użyj wcześniej umieszczonego znacznika prowadzącego na rurce, aby upewnić się, że jest ona wysunięta tylko na tyle daleko, aby wyjść z końca metalowej kaniuli i nie przebić płuca.
  8. Mając obie kaniule na miejscu, użyj dołączonej strzykawki, aby wkroplić 100 μl (dla szczurów) zawiesiny agarowej głęboko do dużego płata lewego płuca (patrz rysunek 1D). Wyciągnąć kilka mm rurki polietylenowej, a następnie delikatnie wyjąć nienaruszone urządzenie do intubacji. Umieść go z powrotem w szklanej tubie do przechowywania i przenieś zwierzę do nowej klatki, aby wyzdrowiało.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rycina 1: Niechirurgiczna intubacja dotchawicza. Pokazane są narzędzia do intubacji szczura (A) i myszy (B). Po znieczuleniu zwierzę powinno być ustawione tak, jak pokazano na rysunku C, z głową po prawej stronie i ogonem po lewej, jeśli osoba wykonująca technikę jest praworęczna. Delikatnie przyłóż lewy palec wskazujący do gardła, ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Narzędzie PrzewodnikIntek Services Sp. z o.oGT01
1 ml TB końcówki strzykawkiBecton Dickinson i spółka309659
Igła PrecisionGlide 25 G x 5/8Becton Dickinson i spółka305122
Rurki polietylenowe IntramedicMarka Clay Adams - Becton Dickinson and Company427401Plastikowa kaniula dla myszy
Igła do karmienia zwierząt - prosta 20 x 3" 2-1/4Popper i Synowie, IncNumer telefonu 7903Służy do tworzenia metalowej kaniuli dla myszy
Strzykawka 75 TN 5,0 μL 26S/2"/2HamiltonNumer katalogowy: 87930Szklana strzykawka iniekcyjna HPLC
Agar odżywczy DifcoBecton Dickinson i spółka213000
Rurka Pyrex, nakrętka kulturowa 25x150 z gumową żyłkąCorningNumer katalogowy: 9825-25Do autoklawu/przechowywania metalowych kaniul
Igła PrecisionGlide 25 G x 5/8Becton Dickinson i spółka305122
70% alkoholu izopropylowegoVi-Jon (Łabędź)NDC 0869-0810-43
Izofluran, USPOpieka zdrowotna PiramalNDC 66794-013-10
50 ml polipropylenowa rurka stożkowa 30 x 115 mmFalcon, marka należąca do CorningNumer katalogowy: 352070
Strzykawka 75 TN 5,0 μL 26S/2"/2HamiltonNumer katalogowy: 87930Szklana strzykawka iniekcyjna HPLC
. powiedział: TGL szt.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Model infekcji p uczawiesina bakteryjnakaniula metalowarurka polietylenowaintubacja tchawicylewy p at p ucaszczepionka na pod o u agarowym

Powiązane artykuły