Artykuł metodologiczny

Procedura wycinania ogona myszy w celu pobrania krwi obwodowej i izolacji osocza

5.7K wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Coats, J. S. et al., Ekspresja cytokin egzogennych w ksenoprzeszczepach pochodzących od pacjentów poprzez wstrzyknięcie z linią komórek zrębowych transdukowaną cytokinami. J. Vis. Exp. (2017)

W tym filmie demonstrujemy procedurę obcinania ogona na modelu myszy w celu pobrania krwi obwodowej. Pobrana krew jest następnie poddawana odwirowaniu w celu oddzielenia osocza, które można wykorzystać do dalszych eksperymentów.

Protokół

Wszystkie procedury związane z modelami zwierzęcymi zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Seryjne pobieranie krwi i monitorowanie osocza pod kątem egzogennych cytokin ludzkich u myszy

  1. Pobieranie krwi za pomocą nożyca ogonowego
    1. Zdezynfekuj kaptur bezpieczeństwa biologicznego i zmontuj ogranicznik myszy, nożyczki i inne narzędzia/materiały do zabiegu.
    2. Umieść mysz w ograniczniku i zabezpiecz rurkę, aby zminimalizować ruchy myszy.
    3. Zdezynfekuj ogon i nożyczki chirurgiczne alkoholem izopropylowym. Nałóż miejscowo krem znieczulający na ogon.
    4. Za pomocą bardzo ostrych nożyczek chirurgicznych odetnij około 0,5 - 1 mm czubka ogona myszy. Pobrać około 80 μl krwi obwodowej za pomocą heparynizowanych kapilarnek naczyń włosowatych.
      nuta: Jeśli krew będzie pobierana tą metodą więcej niż sześć razy, usunięcie ogona powinno być zachowawcze w odniesieniu do ilości usuniętego ogona. W miarę jak nożyce przesuwają się w górę ogona, średnica wzrasta, krwotok jest szybszy, a gojenie trwa dłużej.

2. Separacja plazmy

  1. Przenieść krew za pomocą strzykawki z gruszką (w celu usunięcia jej z kapilary) do znakowanej probówki mikrotainera K2EDTA; odwrócić 20 razy, aby zapobiec krzepnięciu.
    nuta: Zazwyczaj krzepnięcie krwi z uszczypnięcia ogona jest szybkie. Jeśli jednak krwotok utrzymuje się dłużej niż ~ 2 minuty, użyj ołówka/proszku ściągającego, aby wspomóc krzepnięcie.
  2. Odwirować probówki do pobierania krwi zgodnie z instrukcją producenta i poddzielić osocze do przechowywania (-20 °C) do momentu, gdy będzie ono gotowe do dalszej analizy.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Wszczepialny nano transponder dla zwierząt z ka�uląTrubanID-100B(1,25)
Krem znieczulający z lidokainą EMLA (otrzymywany przez recepturę w placówce opieki nad zwierzętami)NakazNakaz
BD 1/2 cc LO-DOSE U-100 Strzykawka do insuliny 28G1/2Bd#329461
Probówki BD Microtainer z K2EDTABd#365974
wirówkaBeckman CoulterAlegra X-15R
Rurki kapilarne FisherBrand (heparynizowane)Fisher Naukowy22-260-950
HemocytometrrybakNumer katalogowy: 02-671-6
Analizator MACSQuant 10Miltenyi BiotecNumer katalogowy: 130-096-343
Klatka na ciasto myszyBraintree Scientific, Inc.Zobacz materiał MPC-1
Ogranicznik oświetlacza ogona myszyBraintree Scientific, Inc.MTI STD
Wszczepiacz uchwytu pistoletowegoTrubanIM-300(1,25)
"Myszy NSG" Skinienie głową. Cg-Prkdcscid Il2rgtm1Wjl/SzJ, samiec lub suczka, wiek 6 – 8 tygodniMyszy JAX# 005557

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

heparynowana kapilaraantykoagulant EDTAwirowanie krwiseparacja osoczastabilizator zwierz tno yczki chirurgicznezjawisko kapilarne

Powiązane artykuły