1. Biotynylacja powierzchni komórek BCG
- Hoduj BCG w bulionie Middlebrook 7H9 z 10% OADC (roztwór kwasu oleinowego, albuminy i dekstrozy) i 0,05% Tween 80 w temperaturze 37 °C na platformie wytrząsającej przy 50 obr./min, aż OD = 0,5-1,
UWAGA: BCG jest patogenem o poziomie bezpieczeństwa biologicznego 2 i wszystkie eksperymenty dotyczące BCG powinny być wykonywane w komorze bezpieczeństwa biologicznego z odpowiednim wyposażeniem ochrony osobistej.
- Przemyj 109 BCG 3 razy 500 μl lodowatego PBS wolnego od endotoksyn plus 0,1% Tween80 (PBST) (pH 8,0). Zawiesić granulat BCG w sterylnym PBS wolnym od endotoksyn.
- Bezpośrednio przed użyciem przygotuj 1 ml 10 ml biotyny Sulfo-NHS SS w sterylnej przefiltrowanej wodzie.
- Inkubować bakterie z 1 ml 0,5 mM biotyny Sulfo-NHS SS w temperaturze pokojowej przez 30 minut.
- Umyj oznakowane bakterie 3 razy 500 μl lodowatego zimnego PBST, aby usunąć nieprzereagowany odczynnik biotynylacji.
- Ponownie zawiesić osad w 1 ml PBST.
2. Wiązanie monomerycznego białka fuzji awidyny z biotynylowaną powierzchnią BCG
- Wymieszaj 5 x 108 biotynylowanych BCG z białkiem Avi (10 μg/ml końcowy w PBS-T) przez 1 godzinę w temperaturze pokojowej na platformie wytrząsarki.
- Umyj bakterie 3 razy 500 μl mrożonego zimnego PBST.