Wszystkie procedury związane z pobieraniem próbek zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytutu IRB.
1. Powłoka płyty
- Pokryć 96-dołkową mikropłytkę poli-L-lizyną (1 mg/ml, rozcieńczony w 0,1 M buforze boranowym [pH: 8,5]; 100 μl/basenik) i inkubować przez noc w temperaturze 37 °C.
nuta: Pokryj tylko te studzienki, które mają być używane. W przeprowadzanych tu eksperymentach wykorzystuje się środkowe 60 studzienek. Bufor boranowy przygotowuje się przez zmieszanie 50 mM kwasu borowego i 12 mM boranu w wysterylizowanej wodzie.
- Umyć płytkę dwukrotnie wysterylizowaną wodą (250 μl/studzienkę).
- Umyć płytkę raz świeżą pożywką hodowlaną bez dodatków (250 μl/dołek).
- Suszyć płytkę na czystej ławce przez 20 minut.
- Owiń talerz folią aluminiową i przechowuj w temperaturze 4 °C do czasu użycia (ważny przez 1 miesiąc).
2. Sadzenie komórek
- Dodać 50 μl/studzienkę pożywki hodowlanej do powlekanej płytki i przechowywać w inkubatorze o temperaturze 37 °C, 5% CO2 przez 30 minut do 1 godziny. Napełnić studzienki obwodowe wysterylizowaną wodą (200 μl/studzienkę).
nuta: Pożywkę hodowlaną przygotowuje się przez dodanie 50x B-27, 400x Glutamax i 100 U/ml penicyliny/streptomycyny do pożywki neuropodstawowej (szczegóły w Tabeli Materiałów).
- Usuń kriowial neuronu ze zbiornika ciekłego azotu. Użyte tutaj neurony były neuronami kriokonserwowanymi dimetylosulfotlenkiem (DMSO-krioprezerwowanymi).
- Zanurz kriowial w bloku grzewczym o temperaturze 37 °C na maksymalnie 3 minuty i częściowo rozmrozić zawartość. Nie rozgrzewaj kriowialu zbyt długo. Przenieś zawartość do probówki o pojemności 50 ml zaraz po jej rozmrożeniu.
- Powoli przenieś zawartość kriowialną neuronu do sterylnej probówki o pojemności 50 ml kroplami (50 μl/s) za pomocą pipety o pojemności 1 ml z końcówką o szerokich porach.
- Przepłukać pusty kriowial 1 ml pożywki hodowlanej (temperatura pokojowa; RT). Przenieść ten 1 ml pożywki hodowlanej z kriowialnego kropli (50 μl/s) do probówki o pojemności 50 ml zawierającej zawiesinę komórkową.
- Dodać kroplami 9 ml pożywki hodowlanej (RT) do probówki o pojemności 50 ml (0,5 ml/s) i uzupełnić objętość do 11 ml. Nie powtarzać pipetowania, ale powoli mieszać zawiesinę komórek.
- Policz liczbę komórek (użyj licznika komórek lub hemocytometru).
- Przenieś całą zawiesinę komórek do zbiornika i dozuj zawiesinę komórek do płytki 96-dołkowej za pomocą pipety wielokanałowej z końcówkami o szerokich porach (1,0 x 104 komórki/studzienkę). Aby zmniejszyć parowanie pożywki hodowlanej, napełnij studzienki obwodowe wysterylizowaną wodą (krok 2.1).
nuta: Badanie to potwierdza, że parowanie pożywki hodowlanej jest małe jak na 3-tygodniową hodowlę bez wymiany pożywki. Szybkość redukcji pożywki wynosi 3,6% (n = 120 dołków). Dzięki temu zmiana osmolalności nie będzie drastyczna podczas 3-tygodniowego okresu inkubacji.
- Inkubować neurony przez 1-2 godziny w inkubatorze o temperaturze 37 °C, 5% CO2 .
- Zastąp pożywkę hodowlaną 100 μl podgrzanej pożywki (37 °C) na studzienkę i umieść ją z powrotem w inkubatorze o temperaturze 37 °C, 5% CO2 (podczas hodowli nie jest wymagana zmiana pożywki).