Artykuł metodologiczny

Budowa trójwymiarowych sieci neuronowych sprzężonych z układami mikroelektrod

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Tedesco, M., et al., Interfacing 3D Engineered Neuronal Cultures to Micro-Electrode Arrays: An Innovative In Vitro Experimental Model. J. Vis. Exp. (2015)

Ten film pokazuje rozwój hodowli neuronów 3D połączonej z planarnym układem mikroelektrod z neuronami hipokampa. Izolowane neurony tworzą sieć 2D w obszarze aktywnym układu mikroelektrod i przylegają do szklanych mikrokulek w wielodołkowej płytce z wkładką membranową. Po przeniesieniu tych pokrytych neuronami mikrokulek do elektrody, organizują się one w połączoną sieć neuronową 3D.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury związane z pobieraniem próbek zostały przeprowadzone zgodnie z wytycznymi instytutu IRB.

1. Sekcja zarodków i dysocjacja tkanek

  1. Dorosłe samice szczurów (200-250 g) trzymane są w pomieszczeniach dla zwierząt w stałej temperaturze (22 ± 1 °C) i wilgotności względnej (50%) w regularnym harmonogramie jasno-ciemnym (światło 7–19). Upewnij się, że jedzenie i woda są swobodnie dostępne.
  2. Znieczulenie ciężarnej samicy szczura po 18 dniach rozwoju (E18) za pomocą 3% izofluranu. Następnie złóż zwierzę w ofierze przez zwichnięcie szyjki macicy.
  3. Usuń hipokampy z każdego zarodka szczura i umieść je w lodowatym roztworze soli Hanka bez Ca2+ i Mg2+. W 18 dniu rozwoju tkanki hipokampa i kory mózgowej są bardzo miękkie i nie trzeba ich kroić na małe kawałki. Więcej szczegółów można znaleźć tutaj.
  4. Zdysocjuj tkankę w 0,125% roztworze trypsyny/Hanka zawierającym 0,05% DNAzy przez 18-20 minut w temperaturze 37 °C.
  5. Usunąć roztwór sklarowany nad osadem za pomocą pipety Pasteura i zatrzymać trawienie enzymatyczne, dodając pożywkę z 10% płodową surowicą bydlęcą (FBS) na 5 minut.
  6. Usuń pożywkę za pomocą FBS i przemyj raz pożywką z jej suplementem, 1% L-glutaminy, gentamycyna 10 μg/ml. Usuń ponownie pożywkę za pomocą pipety Pasteura i ponownie napełnij ją niewielką ilością (500 μl) pożywki wzrostowej z jej suplementem, 1% L-glutaminy, gentamycyną 10 μg/ml.
  7. Oddzielić osad tkankowy mechanicznie za pomocą wąskiej pipety Pasteura, aż do uzyskania mlecznej zawiesiny komórek. Nie ma potrzeby odwirowywania zawiesiny komórek.
  8. Rozcieńczyć małą objętość zawiesiny komórkowej pożywką wzrostową, aby uzyskać końcową objętość 2,0 ml. Policz uzyskane stężenie komórkowe za pomocą komory hemocytometru. Rozcieńczyć to stężenie w stosunku 1:5 w celu uzyskania pożądanego stężenia komórek 600-700 komórek/μl.

2. Poszycie komórek

  1. Płytki komórkowe o gęstości około 2,000 komórek/mm2 na obszarze aktywnym MEA, zdefiniowanym przez ograniczenie PDMS do stworzenia sieci neuronalnej 2D.
    nuta: Każdy hipokamp zawiera około 5 x 105 komórek (1 x 106 dla pojedynczego zarodka). Wypreparuj 6 zarodków, aby uzyskać łączną ilość 6 x 106 komórek w 2 ml i szacowane stężenie 3,000 komórek/μl. Rozcieńczyć to stężenie w stosunku 1:5 w celu uzyskania pożądanego stężenia komórek i płytki około 600-700 komórek/μl. Jeśli obszar MEA ograniczony ograniczeniem PDMS wynosi około 7,065mm2, a całkowita liczba posianych komórek 600 komórek/μl x 24 μl = 14 400 komórek, końcowa gęstość wynosi 2,038 komórek/mm2.
  2. Umieścić urządzenia MEA w inkubatorze z nawilżoną atmosferą CO2 (5%) w temperaturze 37 °C.
  3. Rozprowadzić 160 μl zawiesiny o stężeniu komórek 600-700 komórek/μl (około 100 000 komórek) na powierzchnię monowarstwy mikrogranulek umieszczonej wewnątrz płytek wielodołkowych, aby zakończyć wstępny etap budowy hodowli trójwymiarowej. Umieścić płytki wielodołkowe w inkubatorze z wilgotną atmosferą CO2 (5%) w temperaturze 37 °C.

>3. 3D Budowa sieci neuronowej

  1. 6-8 godzin po posiewie bardzo ostrożnie przenieść zawiesinę (mikrogranulki z neuronami) z płytek wielodołkowych do obszaru ograniczonego ograniczeniem PDMS za pomocą zestawu pipet na objętość około 30-40 μl. Po każdym przeniesieniu odczekaj około pół minuty, aby mikrogranulki mogły się samozorganizować w sześciokątną, zwartą strukturę.
  2. Gdy wszystkie warstwy zostaną osadzone i spontanicznie złożone, ponownie napełnij dużą kroplą około 300 μl podłoża w górnej części obszaru ograniczonego ograniczeniem PDMS.
  3. Umieść strukturę 3D sprzężoną z MEA w inkubatorze (T = 37,0 °C, CO2 = 5%) na 48 godzin przed dodaniem końcowej objętości (około 1 ml) kultury pożywki wzrostowej z jej suplementem.
    nuta: Weź pod uwagę całkowitą liczbę koralików na płytkach wielodołkowych z wkładką membranową (30 000) oraz liczbę koralików na pojedynczej warstwie na urządzeniu MEA (6 000). Powstała struktura 3D składa się z 5 warstw mikrogranulek i komórek. Biorąc pod uwagę, że sieć neuronalna 3D nie jest geometrycznie doskonała, powstała struktura 3D może składać się z 5-8 warstw.
  4. Następnego dnia po posiewie ostrożnie dodać końcową objętość pożywki (około 900 μl) do pierścienia MEA. Utrzymuj kultury 3D w wilgotnej atmosferze CO2 (5%) w temperaturze 37 °C przez 4-5 tygodni. Wymieniaj połowę podłoża raz w tygodniu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
LamininaSigma-AldrichL20200,05 μg/ml
Poli-D-lizynaSigma-AldrichZobacz materiał P64070,05 μg/ml
trypsynaGibco (firma Gibco)25050-0140,125% rozcieńczony 1:2 w HBSS bez jonów wapnia i magnezu
DNAazaSigma-AldrichZobacz materiał D50250,05% rozcieńczone w roztworze Hanksa
NeuropodstawowyGibco Invitrogen21103049Pożywka hodowlana
B27Gibco Invitrogen175040442% średni uplatór
Surowica płodowa bydlęca (FBS)Sigma-AldrichF-244210%
Glutamax-IGibco (firma Gibco)350500380,5 mM
GentamycynaSigma-AldrichG.12725 mg / litr
Poli-dimetylosiloksan (PDMS)Corning Sigma481939Utwardzacz i polimer
Matryce mikroelektrodSystemy wielokanałowe (MCS)60MEA200/30-Ti-prMEA z: Siatka elektrod 8x8; Rozstaw i średnica elektrod odpowiednio 200 i 30 μm; plastikowy pierścień bez gwintu
MikrogranulkiDistrilab-Duke ScientificNumer katalogowy 90401gr Szklana część.Rozmiar Stds 40 μm
Studnia transwellowaGwiazda SigmaZobacz materiał CLS 3413Płytki wielodołkowe z wkładką membranową (porowate 0,4 μm o średnicy 6,5 mm)
HBSS bez jonów wapnia i magnezuGibco InvitrogenNumer katalogowy: 14175-052
Roztwór buforowy HanksaSigmaZobacz materiał H8264
szczurSprague DawleySzczur Wistar
szt.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Tr jwymiarowa sie neuronalnamatryca mikroelektrodneurony hipokampaszklane mikrokulkihodowla neuronalnaadhezja kom rkowasamorzutne sk adaniestruktura sze ciok tnap ytka wielodo kowawarunki inkubacyjne

Powiązane artykuły