Artykuł metodologiczny

Różnicowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych w progenitory nerwowe

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Jeon, K. et al., Efektywne różnicowanie neuronów przy użyciu hodowli pojedynczej komórki ludzkich embrionalnych komórek macierzystych. J. Vis. Exp.(2020)

Ten film pokazuje różnicowanie ludzkich embrionalnych komórek macierzystych, czyli hESC, bezpośrednio w neuronalne komórki progenitorowe bez użycia komórek zasilających lub jakichkolwiek etapów pośrednich. Selektywne hamowanie szlaków sygnałowych białka morfogenetycznego kości lub BMP i transformacji czynnika wzrostu-beta lub TGF-β prowadzi do różnicowania hESC w nerwowe komórki progenitorowe lub NPC.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie płytek pokrytych matrycą z ludzkimi embrionalnymi komórkami macierzystymi (hESC)

  1. Roztwór matrycy błony podstawnej zakwalifikowanej do hESC (patrz tabela materiałów) należy powoli rozmrażać w temperaturze 4 °C przez co najmniej 2–3 godziny lub przez noc, aby uniknąć tworzenia się żelu.
  2. Aby przygotować płytki pokryte matrycą membrany podstawnej, należy rozcieńczyć matrycę w zimnym zmodyfikowanym podłożu Eagle Medium firmy Dulbecco z F12 (DMEM+F12) do końcowego stężenia 2%. Dobrze wymieszać i pokryć każde zagłębienie płytki 6-dołkowej 1 ml rozcieńczonego roztworu matrycowego.
  3. Inkubować płytki pokryte matrycą błony podstawnej w temperaturze pokojowej (RT) przez co najmniej 3 godziny lub w temperaturze 4 °C przez noc.
    nuta: Płytki z matrycą membrany podstawnej można przechowywać w temperaturze 4 °C przez 1 tydzień przed usunięciem roztworu matrycowego i użyciem płytek.

2. Adaptacja hESC typu kolonii do hodowli pojedynczych komórek hESC

  1. Aby przejść przez wolne od karmienia kultury hESC typu kolonii H9 (WA09) wyhodowane na matrycy błony podstawnej, należy zassać pożywkę ze studzienek (ryc. 1A).
  2. Przemyć 1x 1 ml DPBS. Dodać 1 ml roztworu do dyspazy (1 j./ml) do dołka i inkubować w temperaturze 37 °C przez 20 minut.
  3. Usuń papę, delikatnie umyj komórki 2 ml DMEM/F12, usuń pożywkę i dodaj 2 ml DMEM/F12 do każdej płytki.
  4. Delikatnie odłącz kolonie, delikatnie pipetując w górę i w dół, a następnie przenieś do probówki o pojemności 15 ml.
  5. Odwirować granulki przez 2 minuty przy 370 x g i odessać pożywkę.
  6. Aby rozdzielić osady komórkowe na pojedyncze komórki, dodać 2 ml roztworu do oddzielania komórek (stężenie 1x, patrz Tabela Materiałów) i inkubować w temperaturze 37 °C przez 10 minut.
  7. Odwirowywać komórki przez 2 minuty przy 370 x g i usunąć roztwór oddzielający.
  8. Dodaj świeżą pożywkę mTeSR1 z ludzkim ESC i rozdziel komórki na pojedyncze komórki, delikatnie pipetując w górę iw dół.
  9. Aby dostosować hESC typu kolonijnego do hodowli jednokomórkowej, należy umieścić około 1,5–2,0 x 106 hESC w każdym dołku 6-dołkowej płytki pokrytej matrycą błony podstawnej w 2 ml mTeSR1 zawierającej 10 μM inhibitora ROCK przez 24 godziny (Figura 1A).
  10. Po 24 godzinach należy zastąpić pożywkę hESC świeżym mTeSR1 bez inhibitora ROCK i pozwolić hESC rosnąć jako typ jednokomórkowy przez 3 dni. Zmieniaj medium codziennie.
  11. W 4 dniu, gdy kultury osiągną prawie 100% konfluencję, zdysocjuj komórki w roztworze oddzielającym, a następnie ponownie plateruj, jak opisano w kroku 2.6.
    nuta: Inhibitor ROCK poprawia przeżywalność komórek podczas początkowych 24 godzin hodowli pojedynczych komórek typu hESC.

3. Różnicowanie jednokomórkowych komórek hESC na NPC (Rysunek 2)

  1. Aby wywołać różnicowanie NPC, należy zdysocjować jednokomórkowe hESC za pomocą 1 ml roztworu oddzielającego (1x) i inkubować przez 10 minut w temperaturze 37 °C.
  2. Odwirowywać komórki przez 2 minuty przy 370 x g i usunąć supernatant roztworu oddzielającego. Dodać 1 ml DMEM/F12 i zawiesić komórki metodą delikatnego pipetowania.
  3. Komórki płytkowe na 6-dołkowej płytce pokrytej matrycą błony podstawnej o gęstości 2 x 10 5 komórek/studzienkę w 2 ml mTeSR1 zawierającego 10 μM inhibitora ROCK.
  4. Po 24 godzinach zastąp pożywkę hodowlaną pożywką do indukcji neuronalnej (DMEM z 1% B27 minus witamina A) uzupełnioną 1 μM dorsomorfiną i 5 μM SB431542.
  5. Zmieniaj podłoże co drugi dzień przez pierwsze 4 dni indukcji neuronalnej, a następnie codziennie, aż do osiągnięcia konfluencji w 7 dniu (ryc. 2B).
    UWAGA: (1) Dorsomorfina hamuje szlak BMP poprzez celowanie w receptory ALK2,3,6, a także hamuje AMPK; SB431542 jest inhibitorem szlaku TGFβ/aktywina poprzez celowanie w ALK5,7. (2) Ten sam protokół został przetestowany z inną linią ESC (WA01), która dała podobne wyniki jak WA09. (3) Generalnie używaliśmy Matrigelu do matrycy błony podstawnej; jednak komórki mogą być hodowane na Geltrex, a następnie różnicowane w NPC z bardzo podobnymi wynikami, na co wskazuje ekspresja kilku markerów NPC (Figura 3D, E). Z lekiem Geltrex należy obchodzić się w taki sam sposób jak z lekiem Matrigel (patrz punkt 1).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Adaptacja hESC typu kolonijnego do hodowli jednokomórkowej.(A) Reprezentatywne obrazy z kontrastem fazowym pojedynczych kultur komórkowych hESC H9 w różnym czasie po posianiu na 2% szalkach pokrytych matrycą błony podstawnej. Małe (w lewo) i wysokie (po prawej) powiększenie. Górny panel: reprezentatywny obraz hESC typu kolonii. Inne panele pokazują reprezentatywne obrazy ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Płytki 6-dołkoweCorningNumer katalogowy: 3516
DokładnościInnowacyjne technologie komórkoweZobacz materiał AT104-500Rozwiązanie do odłączania komórek
Aktywina ASystem badawczo-rozwojowy338-AC-050
B27 suplement (-Vit A)Rybak termiczny12587010
wirówkaDAMON/LÓDtel. 428-6759
Inkubator CO2Rybak termicznyNumer katalogowy: 4110
Matryca z certyfikatem Corning hESC (Magrigel)Corning354277Macierz błony podstawnej (używana w większości protokołu tutaj)
RozpuśćTechnologie komórek macierzystychZobacz materiał 7923
DMEM (DMEM)Rybak termicznyNumer katalogowy: 10569-010
DMEM/F12Rybak termicznyNumer katalogowy: 10565-018
DorsomorfinaTocris powiedział:Numer katalogowy 3093
Surowica bydlęca płoduFisher NaukowySH3007003HI
Macierz GeltrexRybak termicznyA1569601Matryca membrany podstawnej
GlutaMax (GlutaMaksRybak termiczny35050061Suplement glutaminy, 100X
H9 (WA09) ludzka linia embrionalnych komórek macierzystychWiCell (komórka WiCell)WA09
LamininaSigma AldrichL2020
mTeSR1Technologie komórek macierzystychNumer katalogowy: 85850Pożywka hodowlana hESC
NEAA (Agencja Zdrowia)Rybak termiczny11140050
Inhibitor ROCKTocris powiedział:1254
SB431542Tocris powiedział:Rok 1614
TGL TGL ) powiedział: powiedział: szt.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Neuralne kom rki progenitorowehamowanie BMPsygnalizacja TGF betapo ywka do indukcji neuralnejinhibitor ROCKmacierz b ony podstawnejhodowla pojedynczych kom rektraktowanie dorsomorfinazastosowanie SB431542

Powiązane artykuły