Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Generowanie 3D sfer kokulturowych astrocytów i neuronów w celu indukowania tworzenia synaps

974 wyświetleń

⸱

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Cvetkovic, C., et al. Modelowanie mikroukładów synaptycznych z kokulturami 3D astrocytów i neuronów z ludzkich pluripotencjalnych komórek macierzystych. J. Vis. Exp. (2018).

Ten film demonstruje procedurę kokulturacji astrocytów i neuronów w celu utworzenia sfer 3D. Te sfery 3D stanowią odrębną platformę do badania tworzenia synaps i integracji sieci neuronowych, służąc tym samym jako potencjalny model do badań w neuronauce rozwojowej, chorobach neurodegeneracyjnych i interwencjach neurofarmakologicznych.

Protokół

1. Przygotowanie i utrzymanie kokultur sfer 3D

  1. Odłącz hAstros od agregatów 3D w zawieszeniu.​
    1. Delikatnie oddziel agregaty ludzkich astrocytów (hAstro) za pomocą roztworu odłączającego, gdy pojawią się ciemne centra i usuń kule, które spontanicznie się przyczepiają. Raz w tygodniu delikatnie rozbijaj kule, aby utrzymać je w zdrowiu i uniknąć nekrotycznych rdzeni.
      UWAGA: Nie należy przekraczać 5 minut leczenia roztworem odrywającym.
  2. Dysocjacja hNeurons lub iNeurons od monowarstwy 2D.
    1. Usunąć pożywkę z płytki 6-dołkowej i dodać 500 μl roztworu oddzielającego do każdej dobrze zawierającej monowarstwowej kultury hNeuron (neuron ludzki) lub iNeurons (neurony indukowalne). Inkubować w temperaturze 37 °C przez 5 minut. Delikatnie dodaj 2-3 ml podłoża podstawowego DMEM/F12, aby usunąć przyczepione komórki.
    2. Zebrać komórki i pożywkę w stożkowej probówce o pojemności 15 ml i odwirować przy 300 x g przez 1 minutę. Odessać supernatant, dodać 1 ml świeżej pożywki i delikatnie pipetować w górę i w dół mikropipetą o pojemności 1 000 μl, aby uzyskać zawiesinę jednokomórkową.
  3. Formuj kule 3D za pomocą płytek do hodowli mikrostudzienek.
    1. Przygotuj płytkę, dodając 0,5 ml płynu do płukania zapobiegającego przywieraniu do każdego dołka płytki mikrodołkowej. Płytka wirówkowa o masie 2 000 x g przez 5 min. Odessać roztwór płuczący, dodać 1 ml podłoża podstawowego DMEM/F12 do każdej studzienki w celu przepłukania i ponownie odessać.
      nuta: Zawsze upewnij się, że wirówka jest wyważona podczas użytkowania.
    2. Policz każdy typ komórki za pomocą hemocytometru lub automatycznego licznika komórek. Dodaj żądany stosunek zdysocjowanych hAstros i hNeurons lub iNeurons do każdej studzienki w łącznej objętości 2 ml pożywki neuronowej (NM) + Y (w tym Dox, jeśli wykorzystywane są iNeurony). Odwirować płytkę o masie 100 x g przez 3 minuty i ponownie umieścić w inkubatorze.
      UWAGA: 24-dołkowe płytki mikrodołkowe (patrz Tabela materiałów) zawierają 300 mikrostudzienek na studzienkę. Dodać minimum 6 x 105 komórek (dla kulek po 2 x 10 po3 komórki każda) i maksymalnie 6 x 106 komórek (dla kulek po 2 x 104 komórki każda) w 2 ml pożywki na basenik. W przypadku żywotnych sfer o określonej gęstości w tym zakresie, użyj określonej liczby komórek i podziel przez 300, aby obliczyć liczbę komórek na kulę. W razie potrzeby można również zastosować alternatywne metody i narzędzia do formowania kul. Postępuj zgodnie z instrukcjami producenta, aby uzyskać dopuszczalne zakresy gęstości komórek.
    3. Pozwól komórkom samoorganizować się w gęsto upakowane kulki w płytkach mikrodołkowych w ciągu następnych 2 dni (ryc. 1A). Wymień 50% pożywki, jeśli kultura żółknie.
      nuta: Podczas wyjmowania i dodawania mediów należy delikatnie wymieniać tylko połowę podłoża i pipetować, aby nie zakłócać pracy sfer. Kule mogą unosić się z mikrostudzienek i łączyć się ze sobą z większą siłą.
    4. Po 2 dniach delikatnie wyjmij kulki z mikrostudzienek za pomocą mikropipety o pojemności 1 000 μl (rysunek 2D). Lekko przyłóż siłę do dna mikrostudzienek z mediami, aby usunąć wszelkie dodatkowe przylegające kulki. Pozwól kulkom osiąść w stożkowej probówce o pojemności 15 ml, odessaj stare podłoże i dodaj świeże podłoże.
  4. Skonfiguruj system bioreaktora z kolbą obrotową do formowania kul 3D.​
    1. Oczyść powierzchnię mieszadła magnetycznego 70% etanolem i umieść go w inkubatorze do hodowli komórkowych. Autoklaw poszczególnych kolb obrotowych do sterylizacji.
    2. Dodać kulki z pożywką o minimalnej objętości 50–60 ml do każdej kolby obrotowej (Rysunek 2D, wstawka). Umieścić kolbę na magnetycznej płytce mieszającej ustawionej na 60 obr./min. Kulki hodowlane w kolbach obrotowych, aż będą gotowe do zbierania danych.
      nuta: Do utworzenia synaps potrzebne są co najmniej 3 tygodnie w hodowli.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Rysunek 1: Systematyczne i powtarzalne generowanie bioinżynieryjnych sfer neuronowych 3D. (A) Płytki hodowlane Microwell (μ-well) są używane do tworzenia sfer neuronowych 3D o pożądanej gęstości i stosunku neuronów do astrocytów w sposób systematyczny i określony przez użytkownika, uzyskując spójny rozmiar i kształt. Obrazy są wyświetlane 1 dzień po uformowaniu się sfery. Podziałka ...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Płytka 6-dołkowaFisher Naukowy08-772-1B
Probówki stożkowe 15 mlOlympus Plastics28-101
DokładnościSigmaA6964-100MLRozwiązanie do odłączania
Płyta AggreWellTechnologie komórek macierzystychNumer katalogowy: 34850
Płyn do płukania zapobiegający przywieraniuTechnologie komórek macierzystychZobacz materiał 7010Zapobiegaj przywieraniu komórek do płytek mikrodołkowych
Anty/antyRybak termiczny15240062
B27Rybak termiczny17504044Dodatek dla mediów
Pożywka neuronalna BrainPhysTechnologie komórek macierzystychNumer katalogowy: 5790Neurofizjologiczna alternatywa dla podłoża podstawowego
DMEM/F12Rybak termicznyNumer katalogowy: 10565-042Z suplementem GlutaMAX
DMH-1Technologie komórek macierzystychNumer telefonu 73634ZAGROŻENIE: Toksyczny w przypadku połknięcia. Stężenie robocze: 2 uM
Serum osłaLaboratoria Biologiczne LampireNumer katalogowy: 7332100Stężenie robocze: 5% w pierwotnym buforze blokującym, 1% w wtórnym buforze blokującym
Chlorowodorek doksycykliny (Dox)SigmaD3072-1mlZAGROŻENIE: Działa toksycznie dla kobiet w ciąży. Stężenie robocze: 2 ug/ml
Naskórkowy czynnik wzrostu (EGF)PeprotechAF-100-15Stężenie robocze: 10 ng/ml
Czynnik wzrostu fibroblastów-2 (FGF)Peprotech100-18 mldStężenie robocze: 10 ng/ml
Hemacytometr lub automatyczny licznik komórekTechnologie życioweAMQAX1000
Matrigel membrana matrycowaCorningNumer telefonu 354230Rozwiązanie do powlekania ECM. Stężenie robocze: 80 ug/ml. Przygotuj na lodzie i upewnij się, że pipety, probówki i media są wstępnie schłodzone.
System MEA 2100Systemy wielokanałoweMEA2100
Inhibitor kinazy Rho Y27632- (Y)Tocris powiedział:1254Stężenie robocze: 10 uM
SB431542Technologie komórek macierzystychNumer telefonu 72234Stężenie robocze: 2 uM
Kolby obrotoweFisher NaukowyNr kat. 4500-125
Kolba hodowlana T25Olympus Plastics25-207Wentylowane nasadki
Trypan niebieskiInvitrogenZobacz materiał T10282
TGL powiedział: szt.

Tagi

Sfery do kokultury 3Dkokultura astrocytów i neuronówludzkie pluripotencjalne komórki macierzystepłytki o niskim napięciu powierzchniowymmetoda agregacji komórekhodowla w kolbie z mieszadłemcząsteczki adhezyjne błonyintegracja sieci neuronalnejmodel rozwojowy neuronauk