Artykuł metodologiczny

Różnicowanie komórek ciała zarodka w progenitory nerwowe za pomocą kwasu retinowego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Yang, J., et al. Analiza indukowanego kwasem retinowym różnicowania neuronalnego embrionalnych komórek macierzystych myszy w dwu- i trójwymiarowych ciałach embrionalnych. J. Vis. Exp. (2017).

Film demonstruje metodę indukowania różnicowania komórek macierzystych w progenitory nerwowe za pomocą kwasu retinowego i metody hodowli wiszącej kropli.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Hodowla mysich fibroblastów embrionalnych (MEF)

  1. Przygotuj pożywkę MEF, zmodyfikowaną pożywkę Eagle's firmy Dulbecco (DMEM, o wysokiej zawartości glukozy), uzupełnioną 15% płodową surowicą bydlęcą (FBS).
  2. Pokryj 100 mm szalki do hodowli komórkowych 0,5% roztworem żelatyny przez 30 minut w temperaturze pokojowej (RT).
  3. Policz MEF za pomocą cytometru. Usunąć roztwór żelatyny i natychmiast wlać pożywkę MEF podgrzaną do temperatury 37 °C. Szybko rozmrozić fiolki z MEF nasączone mitomycyną C w łaźni wodnej o temperaturze 37 °C przez 2 minuty, a następnie wysiać 2,8 x 106 MEF na 100 mm naczynie pokryte żelatyną. Dostosuj odpowiednio numer komórki, jeśli używasz naczyń o innych rozmiarach. Inkubować MEF przez noc w temperaturze 37 °C, 5% CO2 .
  4. Zmień podłoże następnego dnia. Hodowla przez 2-3 dni, aż warstwa MEF się zlewa.

2. Embrionalna komórka macierzysta myszy lub hodowla ESC

  1. Przygotuj pożywkę ESC, zmodyfikowaną pożywkę Dulbecco firmy Iscove (IMDM) uzupełnioną 15% FBS i 103 U/ml czynnika hamującego białaczkę (LIF), 0,1 mM aminokwasów endogennych, 55 mM 2-merkaptoetanolu, penicyliny (100 U/ml), streptomycyny (100 μg/ml), gentamycyny (200 μg/ml) i 0,2% antybiotyku mykoplazmowego.
  2. Usuń podłoże MEF z naczynia przygotowanego w kroku 1 i zastąp je wstępnie podgrzanym podłożem ESC o temperaturze 37 °C.
  3. Rozmrozić fiolkę z ESC i komórki nasienne na wierzchu warstwy MEF. Inkubować w temperaturze 37 °C, 5% CO2 , aż ESC osiągną konfluencję.
  4. Przygotuj nowe naczynia do hodowli komórkowych zawierające zlewającą się monowarstwę MEF. Aby przejść przez ESC, przemyj raz PBS i odłącz 0,25% trypsyny/EDTA na 2-5 minut w temperaturze 37 °C, 5% CO2 . Zatrzymaj trypsynizację, dodając świeży IMDM z 15% FBS do oddzielających się komórek, przenieś zawiesinę komórek do probówki o pojemności 15 ml i odwiruj przy 160 x g przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
  5. Usunąć supernatant, ponownie zawiesić ESC z nowym IMDM i przejść jedną piątą komórek do każdego nowego naczynia pokrytego MEF; inkubować, aż komórki osiągną zbieżność (zwykle 4-5 dni).

3. Wycofaj MEFy i ESC do hodowli na płytkach pokrytych żelatyną

  1. Gdy ECS osiągną zbieg, odłącz je i MEF z 0,25% trypsyny/EDTA, jak w kroku 2.4, ponownie zawieś komórki w świeżym IMDM, przenieś na nieprzywierającą bakteriologiczną szalkę Petriego i inkubuj przez 40 minut w temperaturze 37 °C, 5% CO2 .
  2. Ostrożnie przenieść ESC i pożywkę zawierającą MEF na nową płytkę pokrytą żelatyną za pomocą pipety o pojemności 5 ml, unikając wielokrotnego pipetowania. Komórki pozostające na szalkach Petriego są MEF-ami, ponieważ ESC nie przylegają.
  3. Przechodź przez ESC co 3-4 dni. Rzadsze pasażowanie może zmniejszyć pluripotencję ESC. Nie przekraczaj 60% zbiegu, ponieważ może to sprzyjać różnicowaniu.
  4. Powtórz kroki 3.2-3.3 trzy lub więcej razy, w zależności od potrzeb, aż MEF-y nie będą już wykrywalne przez mikroskop hodowli komórkowych, przy użyciu obiektywu 20X, aby upewnić się, że MEF-y nie są obecne.
  5. Sprawdź pluripotencję ESC, sprawdzając hodowlę ESC, aby sprawdzić, czy komórki tworzą gęste kolonie o typowej morfologii wielokątnej ESC (Figura 1A). Przetestuj macierzystość komórki za pomocą ilościowej reakcji łańcuchowej polimerazy odwrotnej transkryptazy (qRT-PCR), immunoblottingu lub immunofluorescencji podstawowych czynników transkrypcyjnych pluripotencji (ryc. 2).

4. Formacja EB

  1. Przygotować roztwór podstawowy all-trans-RA o stężeniu 10 mM w DMSO i podzielić go na 1,5 ml chronionych przed światłem probówek do mikrodymowania. Roztwór jest stabilny w temperaturze -80 °C przez okres do dwóch tygodni. Chroń go przed światłem.
  2. Trypsynizować ESC jak w kroku 2.4; ponownie platerować w świeżym IMDM bez LIF jako zawiesinę jednokomórkową.
  3. Policz komórki za pomocą hemocytometru i przygotuj zawiesinę 5 x 105 komórek/ml w IMDM z 0,5 μM RA.
  4. Umieść 100 kropli 20 μl na 100-milimetrową szalkę Petriego za pomocą 8-kanałowej pipety i końcówek o pojemności 200 μl, odwróć szalki i napełnij odwróconą pokrywkę PBS, aby zapobiec wysychaniu wiszących kropli. Chronić pożywki hodowlane zawierające RZS przed światłem.
  5. Kultura EB w wiszących kroplach w temperaturze 37 °C, 5% CO2 przez 4 dni.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Pojawienie się kiełków z Syx+/+ i Syx-/- EBS w kulturze 3D. (A) ESC Syx+/+ i Syx-/- rosły w skupionych koloniach przed indukcją różnicowania neuronalnego. (B i C) obrazy EB uformowane w wiszących kroplach z 0,5 μM RA, a następnie wstawione do matrycy kolagenowej 3D bez RA. Obrazy zostały wykonane w dniu 6 przez wskazane obiektywy (Skala = 100 μm...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Materiałów
Platformy MEFEMD MiliporePMEF-CFWarstwa zasilająca ESC
EscEMD MiliporeCMTI-2
Naczynie do hodowli komórkowych (60 mm)Eppendorf30701119Hodowla komórkowa
Naczynie do hodowli komórkowych (100 mm)sokół353003Hodowla komórkowa
szalka Petriego (100 mm)Corning351029Wiszące krople
Ciemna probówka wirówkowa o pojemności 1,5 mlProdukty naukowe Celltreat229437Roztwór podstawowy RA
Szklana osłona mikroskopuMarka rybacka12-545-80Okrągły, średnica 12 mm
Szkiełka mikroskopowe Superfrost-plusMarka rybackaNumer katalogowy 12-550-15
Odczynniki
DMEM (DMEM)Lonza12-709FKultura MEFs
IMDM (Międzynarodowa Organizacja ZarządzaniaGibco (firma Gibco)Numer katalogowy: 12440-046Kultura RSG
Surowica płodowa bydlęca (FBS)EMD MiliporeES-009-BKultura RSG
żelatynaSigma-AldrichKlasa g2625Panierowanie naczyń
LifSystemy badawczo-rozwojowe8878-LF-025Aby utrzymać pluripotencję ESC
Roztwory aminokwasów endogennych MEMGibco (firma Gibco)11140050Hodowla komórkowa
2-merkaptoetanolGibco (firma Gibco)21985023Hodowla komórkowa
Penicylina-StreptomycynaGibco (firma Gibco)15140122Hodowla komórkowa
GentamycynaGibco (firma Gibco)15750060Hodowla komórkowa
MycoZap Plus-PRLonzaVZA-2022Hodowla komórkowa
0,25% trypsyna-EDTAGibco (firma Gibco)Numer katalogowy 25200-072Hodowla komórkowa
DmsoSigma-AldrichZobacz materiał D2650
Kwas all-trans-retinowySigma-AldrichCzynnik chłodniczy R2625-50MGIndukcja różnicowania neuronalnego
PbsGibco (firma Gibco)10010049
Instrumentów
Mikroskop szerokokątnyNikonZaćmienie TS100Obrazowanie kultur komórkowych
powiedział: T

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

embrionalne kom rki macierzystehodowla w kropelce wisz cejformowanie cia embroidalnychr nicowanie progenitor w neuronalnychtraktowanie trypsyn z EDTAprzygotowanie zawiesiny kom rkowejzbieranie przez wirowaniezapobieganie buforem PBSsuplementacja po ywki IMDM

Powiązane artykuły