Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Analiza reaktywacji nerwowych komórek macierzystych w hodowanych eksplantatach mózgu Drosophila

812 wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Naomi Keliinui, C., et al. Reaktywacja nerwowych komórek macierzystych w hodowanych eksplantatach mózgu Drosophila. J. Vis. Exp. (2022).

Ten film demonstruje protokół do identyfikacji czynników egzogennych, które inicjują reaktywację nerwowych komórek macierzystych mózgu Drosophila ze stanu spoczynku. Świeżo wyklute larwy są preparowane w celu wyizolowania ich mózgów, które są następnie hodowane w pożywce z lub bez hormonu testowego w celu oceny potencjału hormonu do indukowania reaktywacji i proliferacji nerwowych komórek macierzystych.

Protokół

1. Przygotowanie pożywek hodowlanych i narzędzi

  1. Spryskaj ławkę i miejsce pracy 70% etanolem i pozostaw do wyschnięcia.
  2. Spryskaj narzędzia do preparacji, kleszcze i dwie szklane naczynia do zegarków 70% etanolem i pozostaw do wyschnięcia na stole.
  3. Przygotować uzupełnioną pożywkę Schneidera (SSM, tabela 1) i umieścić ją na lodzie.
  4. Odpipetować 1 ml SSM do każdej ze szklanych naczyń zegarka.
  5. Za pomocą mikropipety ze sterylną końcówką przenieś świeżo wyklute larwy z płytki PBS do SSM w pierwszym szklanym naczyniu do zegarka. Za pomocą mikropipety ze sterylną końcówką przenieś świeżo wyklute larwy do SSM w drugim szklanym naczyniu do zegarka.

2. Sekcje i kultury mózgu

  1. Gdy larwy znajdą się w drugim szklanym naczyniu zegarkowym z SSM, wypreparuj mózgi z larw za pomocą kleszczy i mikroskopu preparacyjnego. Dostosuj powiększenie zgodnie z potrzebami.
  2. Użyj jednego kleszczyka, aby chwycić haczyki do ust, a drugim delikatnie chwyć ciało do połowy i pociągnij w przeciwnym kierunku (ryc. 1), aby podzielić larwę na dwie części.
    nuta: Mózg będzie zlokalizowany tuż za haczykami ustnymi. Należy pamiętać, że wokół mózgu mogą znajdować się inne tkanki. Zachowaj ostrożność podczas usuwania tych tkanek, ponieważ może to spowodować uszkodzenie mózgu.
  3. Po wypreparowaniu 15-20 mózgów dodaj 1 ml SSM do jednego dołka sterylnej 12-dołkowej tacki hodowlanej. Przenieś świeżo wypreparowane mózgi do SSM za pomocą mikropipety i sterylnej końcówki (ryc. 2A).
  4. Umieścić mózgi w pożywce SSM w 12-dołkowej tacce hodowlanej w inkubatorze w temperaturze 25 °C na 24 godziny (ryc. 2A).

Tabela 1: Przepis na wykonanie uzupełnionych mediów Schneidera (SSM). W tabeli podano objętość wszystkich składników potrzebnych do przygotowania 5 ml SSM.

Składnik (stężenie początkowe)Aby zrobić 5 mlKońcowe stężenie
Drosophila media Schneidera3,89 ml
Surowica bydlęca płodu (100%)500 μL<10%
Glutamina (200 mM)500 μL20 mM
Penicylina (5000 jednostek/ml), streptomycyna (50 000 μg/ml)100 μLWstrzykiwacz 1000 U/ml, paciorkowiec 1 mg/ml
Insulina (10 mg/ml)10 μL0,02 mg/ml
glutation (50 mg/ml)5 μL0,05 mg/ml
W sterylnym kapturze, używając sterylnej techniki, dodaj wszystkie składniki razem do stożkowej probówki o pojemności 14 ml. Umieść go na lodzie do czasu użycia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1
Ryc. 1: Larwy Drosophila w szklanym naczyniu zegarkowym z SSM. Kleszcze są odpowiednio ustawione do sekcji. Mózg larwy znajduje się za haczykami gębowymi (czarnymi) i oba są pokazane wewnątrz larwy.

figure-results-2
Rysunek 2: Posiew mózgu i barwienie immun...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
10 μL Końcówki do pipetDenville SciZobacz materiał P2102
1000 μL Końcówki do pipetDenville SciZobacz materiał P2103-N
Pipetor 1000 μLGilsonZobacz materiał P1000
24-dołkowe płytki do hodowli wielodołkowychFisher Naukowy50-197-4477
Szalki Petriego 35 mmFisher Naukowy08-757-100ASkładniki na talerz winogronowy
Mikroskop preparacyjnyZeissStemi 2000
Etanol 200 proof (100%), Decon Labs, butelka o pojemności 1 galonaFisher NaukowyNumer katalogowy 2701Służy do zmywania larw przed 24-godzinnym przetrzymywaniem w pożywce hodowlanej
Surowica bydlęca płodu (10%)SigmaF4135-100MLSuplement do pożywek do hodowli komórkowych.
Cienkie kleszcze do preparowaniaNarzędzia naukoweRozdział 11295-20Forcepty stosowane w dysekcjach. Najlepiej sprawdzają się po naostrzeniu.
Szklana miska preparcyjna (3 dołki)Nie są one już dostępne
glutationSigmaKontroler G6013Zapewnia ochronę oksydacyjną podczas hodowli komórkowej.
inkubatorThermo Fisher NaukowyZapewnia, że temperatura, wilgotność i ekspozycja na światło są dokładnie takie same przez cały eksperyment.
insulinaSigmaI0516Zmienna niezależna eksperymentu
Okap z przepływem laminarnymDo porcjowania pożywek hodowlanych
L-glutaminaSigmaKlasa G7513Zapewnia wsparcie podczas hodowli komórkowej
Pióro-paciorkowiecSigmaP4458-100mlAntybiotyki stosowane w celu zapobiegania skażeniu bakteryjnemu komórek podczas hodowli.
Bufor fosforanowy, pH 7,4Wyprodukowano we własnym zakresieWyprodukowano we własnym zakresieRozpuszczalnik używany do mycia mózgów po stopniach mocowania i barwienia
wybraćNarzędzia naukoweNumer katalogowy: 10140-01Służy do zbierania larw z talerza winogronowego
Pożywka hodowlana SchneidersTechnologia życiowa21720024Zawiera składniki odżywcze, które pomagają komórkom rosnąć i namnażać
Sterylna wodaAutoklaw Milli-Q woda wyprodukowana we własnym zakresiePotrzebne do rozwiązań
powiedział: powiedział: się

Tagi

Disekcja m zguterapia hormonalnaanaliza proliferacji kom rekwyj cie ze stanu spoczynkuinkubacja w po ywce hodowlanejszlaki sygnalizacji downstreamwi zanie receptor w NSCsterylna hodowla w p ytkach 24 do kowych