Artykuł metodologiczny

Iniekcja doplastycznej w głąb ciała szklistego w celu ustanowienia modelu chorób oczu

37.4K wyświetleń

DOI:

10.3791/313

1 października 2007

W tym artykule

Podsumowanie

Iniekcja doszklistkowa jest powszechnie stosowaną techniką w badaniach nad naukami o widzeniu w kontekście chorób oczu lub jako metoda bezpośredniego zastosowania miejscowego leczenia. W tym filmie zaprezentowano protokół iniekcji doszklistkowej z użyciem strzykawki o pojemności 1ml z szklaną pipetą. Przedstawiono praktyczne wskazówki dotyczące unikania masywnych krwawień oraz uszkodzeń soczewki.

Streszczenie

Iniekcja domacicza jest powszechnie stosowaną techniką w badaniach nad naukami o wzroku. Może być wykorzystywana do tworzenia modeli zwierzęcych chorób oczu lub jako bezpośrednia aplikacja miejscowej terapii. W niniejszym filmie przedstawiono sposób wykorzystania prostych i niedrogich narzędzi do przeprowadzenia procedury iniekcji domaczycznej. Zastosowano strzykawkę o pojemności 1 ml zamiast strzykawki Hamiltona. Przedstawiono praktyczne wskazówki dotyczące przygotowania odpowiednich igieł do iniekcji z pipet szklanych o idealnych końcówkach oraz sposobu szczelnego i łatwego połączenia igły strzykawki z pipetą szklaną.

Aby prawidłowo przeprowadzić zastrzyk domacicowy, należy przestrzegać trzech aspektów: 1) miejsce wstrzyknięcia nie powinno naruszać struktury siatkówki; 2) należy unikać krwawienia, aby zmniejszyć ryzyko infekcji; 3) soczewka nie powinna zostać dotknięta, aby uniknąć zaćmy pourazowej. Krótko mówiąc, najważniejszym punktem jest zminimalizowanie naruszenia prawidłowej struktury oka. Aby uniknąć uszkodzenia siatkówki, wybrano górny nosowy region oka szczura. Ponadto punkt nakłucia igłą znajdował się na poziomie płaszczyzny równoległej, około 1,5 mm od regionu limbalnego oka szczura. Przed wstrzyknięciem, poprzez otwór nakłucia, delikatnie usuwa się niewielką ilość ciała szklistego, aby obniżyć ciśnienie wewnątrzgałkowe. Kąt wstrzyknięcia wynoszący 45° zmniejsza prawdopodobieństwo wystąpienia zaćmy pourazowej w oku szczura, co pozwala uniknąć związanych z nią powikłań oraz wpływu czynników soczewkowych. Podczas tego zabiegu nie dochodzi do przecięcia spojówki ani mięśni oka, ani do krwawienia. Dzięki szybkości i minimalnemu zakresowi urazu, udany zastrzyk domacicowy można wykonać w ciągu kilku minut.

Zestaw do iniekcji opisany w tym konkretnym protokole jest przeznaczony do iniekcji do ciała szklistego. Przedstawione tutaj metody i materiały mogą być jednak wykorzystane również w innych procedurach podawania leków do mózgu, rdzenia kręgowego lub innych narządów u małych ssaków.

Protokół

  1. Przygotować szklane pipety za pomocą wyciągacza do pipet, podłączyć je do strzykawki 1 ml i uszczelnić połączenie parafilmem. Nabrać 2 µl roztworu do końcówki pipety i przygotować do wstrzyknięcia.
  2. Zanestezjować szczura poprzez podanie doszprysowe ketaminy (80 mg/kg) i ksylazyny (8 mg/kg) (stosunek objętości 2:1).
  3. Przed wstrzyknięciem do ciała szklistego nanieść jedną kroplę 0,5% alkainy do oczu szczura jako znieczulenie miejscowe.
  4. Ustawić szczura i odsłonić górny obszar nosowy oka.
  5. Używając igły o rozmiarze 30 G, nakłuć górną część twardówki od strony nosowej na poziomie pars plana. Należy unikać dotykania mięśni ocznych i naczyń krwionośnych.
  6. Wywrzeć lekki nacisk na gałkę oczną, aby usunąć niewielką ilość ciała szklistego z tylnej komory przez otwór nakłucia.
  7. Wprowadzić końcówkę szklanej pipety przez otwór nakłucia pod kątem 45° przez twardówkę do ciała szklistego. Wstrzyknąć 2 µl roztworu do tylnej komory i pozostawić w tym miejscu przez kilka sekund, a następnie delikatnie wyciągnąć igłę. Należy unikać dotykania soczewki i naczyń wewnątrzgałkowych.
  8. Po wstrzyknięciu do ciała szklistego nanieść na oko szczura maść okulistyczną Tobrex w celu zapobiegania infekcji.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Dyskusja

Prawidłowe wstrzyknięcie domaciczyście jest przydatne zarówno przy tworzeniu modeli zwierzęcych, jak i w bezpośrednim leczeniu wewnątrzgałkowym. Po pierwsze, miejsce wstrzyknięcia nie powinno naruszać struktury siatkówki. Po drugie, należy unikać krwawienia, aby zmniejszyć ryzyko infekcji. Po trzecie, soczewka nie powinna zostać dotknięta, aby uniknąć traumatycznej zaćmy. Najważniejsze jest zminimalizowanie zakłócenia prawidłowej budowy oka.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Zwierzęta były traktowane zgodnie z protokołem wykorzystania zwierząt w badaniach zatwierdzonym przez Komitet ds. Wykorzystania Żywych Zwierząt w Nauczaniu i Badaniach (CULATR) Uniwersytetu w Hongkongu oraz zgodnie z oświadczeniami Association for Research in Vision and Ophthalmology dotyczącymi wykorzystania zwierząt w badaniach okulistycznych i badaniach nad wzrokiem.

Podziękowania

Badania nad jaskrą w tym laboratorium są wspierane przez National Glaucoma Research z American Health Assistant Foundation.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Mikroskop operacyjnyOlympus CorporationOME
Pipety szklaneWorld Precision Instruments, Inc.
Wytciągacz pipetDavid Kopf Instruments
Strzykawki 1mljednorazowe
Igły 30Gjednorazowe
KetaminaAldasanśrodek znieczulający
KsylazynaAldasanśrodek znieczulający
AlcaineAlcon0.5% chlorowodorek proparakainy
TobrexAlconmaść, 3% tobramycyna

Bibliografia

  1. Chiu, K., Lam, T. T., Ying Ku, W. W., Caprioli, J., Kwong Kwong, J. M. Calpain and N-methyl-d-aspartate (NMDA)-induced excitotoxicity in rat retinas. Brain Research. 1046, 207-215 (2005).
  2. Fisher, D., Pavlidis, M., Thanos, S. Cataractogenic lens injury prevents traumatic ganglion cell death and promotes axonal regeneration both in vivo and in culture. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41, 3943-3954 (2000).
  3. Ji, J. -Z., Elyaman, W., Yip, H. K., Lee, V. W. H., Yick, L. -W., Hugon, J., So, K. -F. CNTF promotes survival of retinal ganglion cells after induction of ocular hypertension in rats: the possible involvement of STAT3 pathway. European Journal of Neuroscience. 19, 265-272 (2004).
  4. Lam, T. T., Abler, A. S., Kwong, J. M. K., Tso, M. O. M. N-Methyl-D-Aspartate (NMDA)-Induced Apoptosis in Rat Retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 40, 2391-2397 (1999).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Model choroby oczuig a z pipety szklanejstrzykawka 1 mlk t 45 stopniwstrzykni cie do tylnej komoryznieczulenie miejscowema antybiotycznaochrona siatk wkiunikanie soczewki

Powiązane artykuły