Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Określanie toksyczności neuronów wywołanej przez nanocząstki przy użyciu mikrogleju jako zastępczego bioczujnika

849 wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Duffy, C. M. et al., Microglej jako zastępczy bioczujnik do określania neurotoksyczności nanocząstek.J. Vis. Exp. (2016).

Ten film demonstruje metodę oceny neurotoksycznych efektów nanocząsteczek za pomocą mikrogleju. Przedstawiono w nim etapy aktywacji mikrogleju za pomocą nanocząstek, filtrowania kondycjonowanych pożywek w celu wyizolowania cytokin prozapalnych pochodzących z mikrogleju oraz testowania toksyczności neuronów podwzgórza za pomocą kondycjonowanych pożywek.

Protokół

1. Utrzymanie hodowli komórek mikrogleju

  1. Pożywka do hodowli komórkowych w ciepłych komórkach (Dulbecco's Modified Eagle Medium; DMEM) uzupełnione 10% płodową surowicą bydlęcą (FBS) i 1% penicyliną/streptomycyną/neomycyną (PSN) do 37 °C.
  2. Otrzymać zamrożony materiał komórek mikrogleju BV2 w pasażu 18-25 z przechowywania w temperaturze -80 °C. Szybko rozmrozić komórki w łaźni wodnej o temperaturze 37 °C.
  3. Delikatnie przenieść komórki do kolby z wentylacją o średnicy 75cm2 zawierającej 10 ml pożywki do hodowli komórkowych.
  4. Inkubować kolbę w 5% CO2 w temperaturze 37 °C. Po 24 godzinach odessać pożywkę i zastąpić ją świeżą pożywką. Hoduj komórki do około 70-80% zbieżności.

2. Liczenie i powlekanie komórek

  1. W łaźni wodnej o temperaturze 37 °C ciepły roztwór DMEM i 1x-trypsyna-etylenodiaminotetraoctowy (EDTA).
  2. Odessać pożywkę z komórek i dodać 500 μl trypsyny. Inkubować w temperaturze 37°C przez 2 - 5 minut.
  3. Za pomocą skrobaka usunąć komórki z kolby i zawiesić w 5 ml DMEM. Przepuścić komórki przez sitko o średnicy 70 μm do probówki o pojemności 50 ml trzy razy.
  4. Policz komórki za pomocą hemocytometru i zasiej 8 000 komórek / studzienkę na przezroczystej płytce dolnej o czarnych ściankach w końcowej objętości 200 μl DMEM uzupełnionej 10% FBS i 1% PSN. Inkubować płytkę w 5% CO2 w temperaturze 37 °C przez 24 godziny.
  5. Usuń stary DMEM i zastąp go 200 μl podgrzanego DMEM uzupełnionego 1% PSN, aby surowicy głodzą mikrogleju. Inkubować płytkę w 5% CO2 w temperaturze 37 °C przez 24 godziny.

3. Aktywacja mikrogleju

  1. W oddzielnych probówkach rozcieńczyć nanocząstki srebra (AgNPs) (0,01, 0,05 lub 0,1 μg/ml) i kontrolę nośnika/obojętnego (cytrynian sodu, 0,04 mM) w DMEM bez surowicy uzupełnionym 1% PSN do końcowych stężeń roboczych.
  2. Usunąć 100 μl pożywki z każdej studzienki i zastąpić 100 μl odpowiedniego środka do uzdatniania.
  3. Inkubować płytkę w 5 % CO2 w temperaturze 37 °C przez 24 godziny.

4. Filtrowanie mediów kondycjonowanych

  1. Zebrać 200 μl supernatantu pożywki z każdej studzienki i przenieść go do filtra (odcięcie masy cząsteczkowej 10 kDa) z probówką zbiorczą (pojemność 1,5 do 2 ml).
  2. Wirować przy 14 000 x g w temperaturze pokojowej przez 15 min.
  3. Wyrzuć przepływowy (supernatant z cząstkami) i umieść filtr do góry nogami w nowej probówce zbiorczej.
  4. Wirować przy 1 000 x g w temperaturze pokojowej przez 2 min.
    nuta: Powstałe przefiltrowane pożywki (zawierające wydzielane cytokiny) są skoncentrowane sześciokrotnie.
  5. Doprowadzić objętość koncentratu do 400 μl za pomocą świeżego DMEM uzupełnionego 10% FBS i 1% PSN i przechowywać na lodzie.

5. Utrzymanie hodowli komórek podwzgórza

  1. Ciepła pożywka do hodowli komórkowych DMEM uzupełniona 10% FBS i 1% PSN do 37 °C.
  2. Otrzymać zamrożony zapas komórek podwzgórza (mHypo-A1/2) w czasie pasażu 18-25, przechowywany w temperaturze 80 °C. Szybko rozmrozić komórki w łaźni wodnej o temperaturze 37 °C.
  3. Delikatnie przenieść komórki do kolby z wentylacją o średnicy 75cm2 zawierającej 10 ml pożywki do hodowli komórkowych.
  4. Inkubować kolbę w 5% CO2 w temperaturze 37 °C. Po 24 godzinach odessać pożywkę i zastąpić ją świeżą pożywką. Hoduj komórki, aż osiągną około 70-80% zbieżności.

6. Określanie toksyczności komórek podwzgórza

  1. Ciepły roztwór DMEM i 1x-trypsyna-EDTA w łaźni wodnej o temperaturze 37 °C.
  2. Odessać pożywkę z komórek podwzgórza i dodać 500 μl trypsyny. Inkubować w temperaturze 37 °C przez 2 - 5 minut. Usunąć komórki z kolby za pomocą skrobaka, jak opisano powyżej w kroku 2.
  3. Policz komórki za pomocą hemocytometru i płytkuj komórki podwzgórza w 5 000 komórek/studzienkę na przezroczystej płytce dolnej o czarnych ściankach w końcowej objętości 200 μl DMEM uzupełnionej 10% FBS i 1% PSN i inkubuj przez noc w 5% CO2 w temperaturze 37 °C.
  4. Usunąć 100 μl starych pożywek za pomocą pipetora wielokanałowego i dodać 100 μl przefiltrowanych, skoncentrowanych kondycjonowanych pożywek do końcowego stężenia 1x.
  5. Inkubować płytkę w 5% CO2 w temperaturze 37 °C przez 24 godziny.
  6. Dodać 22 μl odczynnika rezazuryny i inkubować płytkę przez 20 minut w 5% CO2 w temperaturze 37 °C.
  7. Za pomocą spektrofotometru wielomodowego zarejestruj fluorescencję (560 nm EX/590 nm EM) w celu zmierzenia żywotności komórek. Raportuj wyniki jako względne jednostki fluorescencji (RFU).

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Komórki/odczynniki
Mysia linia komórkowa mikrogleju (BV2)Interlab Cell Line Collection (Genua, Włochy)ATL03001
Linia komórkowa podwzgórza dorosłej myszy mHypoA-1/2 Cellutions Biosystems Inc.CLU172
Zmodyfikowany Medium Orła DulbeccoInvitrogenNumer katalogowy: 10313-039
Surowica bydlęca płodu Laboratoria PAAA15-751
Penicylina/Streptomycyna/NeomycynaThermo Fisher NaukowyNumer katalogowy: 15640-055
Trypsyna-EDTAThermo Fisher Naukowy25200056
Nanocząstki srebra (20nm)Sigma-Aldrich730793
Odczynnik do żywotności komórek PrestoBlueInvitrogenA13262
Mysz TNF-α ELISA Max DeluxLegenda biologiczna430904
LipopolisacharydSigma-AldrichL4391
Cytrynian soduSigma-AldrichZobacz materiał S4641
sprzęt
Dolna płyta optyczna 96 W, polistyren, poddany hodowli komórkowej, z pokrywką, sterylnyThermo Fisher Naukowy165305
Filtr odśrodkowy Amicon Ultra-0.5 z membraną Ultracel-10EMD MiliporeUFC501008
SpectraMax M5 Mikropłytka wielomodowaUrządzenia molekularneZobacz materiał M5
Stożkowe probówki wirówkowe Falcon 50 mlCorning, IncNumer katalogowy: 14-432-22
Sitka Falcon Cell 70 μmCorning, IncNumer katalogowy: 08-771-2
Wirówka stołowa 5430Eppendorf22620560
powiedział: powiedział:

Tagi

Neurotoksyczność nanocząsteczekbiosensor mikroglejowyfiltracja cytokinneurony podwzgórzatest rezazurynowynanocząsteczki srebracytokiny prozapalnebadanie żywotności komórekaktywacja mikroglejuśmierć neuronalna