Artykuł metodologiczny

Ustalenie mysiego modelu neuropatii małych włókien przy użyciu resiniferatoksyny

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Lee, Y. et al., Ustalanie mysiego modelu czystej neuropatii drobnowłóknistej z ultrasilnym agonistą przejściowego potencjału receptora waniloidowego typu 1.J. Vis. Exp.(2018).

Ten film demonstruje metodę tworzenia modelu neuropatii małych włókien u myszy przy użyciu agonisty TRPV1 resiniferatoksyny (RTX). Przedstawiono w nim etapy związane z podawaniem RTX myszom i wyjaśniono, w jaki sposób RTX indukuje śmierć neuronów w neuronach czuciowych o małej średnicy, ustanawiając w ten sposób model neuropatii.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny instytucjonalny komitet opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Powstanie neuropatii resiniferatoksyny (RTX)

UWAGA: RTX jest neurotoksyczny i niebezpieczny. W kontakcie działa drażniąco na oczy, błony śluzowe i górne drogi oddechowe. Unikaj inhalacji i noś okulary i fartuchy laboratoryjne podczas przygotowywania RTX. Spłukać dużą ilością wody w przypadku kontaktu ze skórą lub po użyciu.

  1. Dodać 1 mg proszku RTX do mieszaniny 200 μl o równej objętości Tween 80 i absolutnego etanolu (100 μl na każdy rozpuszczalnik).
  2. Roztwór RTX należy podać na porcję (12 μl/fiolkę) i przechowywać w temperaturze -20 °C przez okres do 3 miesięcy. To jest akcja RTX; odrzuć pozostałe rozwiązanie RTX po wygaśnięciu.
  3. Rozcieńczyć wywar RTX zwykłą solą fizjologiczną do końcowej objętości 600 μl. Końcowe stężenie roztworu RTX powinno wynosić 0,01%, co odpowiada 1 μg RTX w 10 μl roztworu pojazdu.
  4. Wykorzystać 8-tygodniowe dorosłe samce myszy ICR (35-40 g) jako zwierzęta doświadczalne i podać myszom pojedynczą dawkę roztworu RTX (dawka: odpowiednio 200, 50 i 10 μg/kg) dootrzewnowo (i.p.) za pomocą strzykawki do mikroiniekcji. Myszy znieczulono inhalatorem z 5% izofluranem w celu głębokiego znieczulenia. Jeśli myszy wykazywały działanie odstawienne kończyn podczas wstrzykiwania RTX, myszy powinny przyjmować dłuższe wdychanie znieczulenia.
    Przykład: Jeśli mysz waży 40 g, to otrzyma 20 μl roztworu RTX, co odpowiada dawce 50 μg/kg.
  5. Jednej grupie myszy należy podać równą objętość nośnika (10% Tween 80 i 10% bezwzględnego etanolu w roztworze soli) jako kontrolę.
  6. Po wstrzyknięciu RTX umieść myszy z powrotem w plastikowej klatce w 12-godzinnym cyklu światła/12-godzinnym ciemnym cyklu i zapewnij im jedzenie i wodę ad libitum.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Odczynnik chemiczny
ŻywicaSigmaCzynnik R8756
Animacja 80SigmaZobacz materiał P1754
powiedział:

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

ResiniferatoxinTRPV1 AgonistSmall Fiber NeuropathyMouse ModelIntraperitoneal InjectionDorsal Root GangliaIntraepidermal Nerve FibersNeuronal DeathCalcium InfluxTRPV1 Receptor

Powiązane artykuły