Artykuł metodologiczny

Modelowanie zwyrodnienia i regeneracji siatkówki u danio pręgowanego za pomocą ogniskowego urazu laserowego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Conedera, F. M., et al. Müller Aktywacja komórek glejowych w laserowo indukowanym modelu degeneracji i regeneracji siatkówki u danio pręgowanego. J. Vis. Exp. (2017).

Ten film demonstruje procedurę wywoływania zwyrodnienia siatkówki u dorosłych ryb pręgowanych za pomocą uszkodzenia laserowego. Laser celuje w komórki fotoreceptorowe w siatkówce, wywołując śmierć komórki i proces zwyrodnieniowy. To uszkodzenie aktywuje komórki glejowe Müllera (MG), prowadząc do ich odróżnicowania w komórki progenitorowe komórek macierzystych, które pomagają w regeneracji siatkówki.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Zwierzęta

  1. Utrzymuj szczep TgBAC (gfap:gfap-GFP) zebry 167 (AB) w wieku od 6 do 9 miesięcy w standardowych warunkach w wodzie o temperaturze 26,5 °C i cyklu 14/10 godzin światła/ciemności.

2. Odwracalne znieczulenie ogólnoustrojowe

  1. Przygotować roztwór podstawowy soli metanosulfonianu 3-aminobenzoesanu etylu (trikainy), rozpuszczając 400 mg proszku trikainy w 97,9 ml wody w zbiorniku i 2,1 ml 1 M soli fizjologicznej buforowanej tris (TBS). Doprowadzić do pH 7,0 za pomocą 1 M Tris (pH 9) i przechowywać w temperaturze 4 °C w ciemności do jednego miesiąca.
    nuta: Trikaina powinna być przygotowywana w wodzie, tak jak naturalne warunki życia zwierzęcia, najlepiej należy używać oryginalnej wody ze zbiornika.
  2. Rozcieńczyć roztwór podstawowy w stosunku 1:25 w wodzie w zbiorniku i natychmiast zużyć.
  3. Umieść danio pręgowanego na 10-centymetrowej szalce Petriego zawierającej 50 ml roztworu znieczulającego, aż staną się nieruchome i nie będą reagować na bodźce zewnętrzne (około 2 - 5 minut, w zależności od wagi i wieku).
  4. Przenieś każdą rybę ręcznie do specjalnie wykonanego silikonowego uchwytu na szpilki do obróbki laserowej (Rysunek 1A).
    ostrożność! Ryby mogą pozostać znieczulone na zewnątrz zbiornika tylko do 10 minut.
  5. Aby odwrócić znieczulenie po zabiegu i/lub obrazowaniu, umieść danio pręgowanego w pojemniku zawierającym wodę w zbiorniku.
  6. Aby wspomóc regenerację, stwórz przepływ świeżej wody w zbiorniku przez skrzela, przesuwając danio pręgowanego w przód iw tył w wodzie.

3. Laserowe uszkodzenie ogniskowe siatkówki

UWAGA: Laser diodowy o długości fali 532 nm jest używany do tworzenia ogniskowych uszkodzeń świetlnych na siatkówce danio pręgowanego. Eksperymentalna konfiguracja lasera umożliwia ustalenie powtarzalnego ogniskowego uszkodzenia siatkówki u dorosłych ryb pręgowanych.

  1. Ustaw moc wyjściową lasera: 70 mW; średnica anteny: 50 μm; czas trwania impulsu: 100 ms.
    ostrożność! Stosowanie światła laserowego wymaga odpowiedniego zabezpieczenia osobistego i oznakowania terenu.
  2. Przed zabiegiem nanieść miejscowo 1 - 2 krople 2% hydroksypropylometylocelulozy do oka i użyć soczewki lasera do dna oka o średnicy 2,0 mm, aby skupić wiązkę celującą laserem na siatkówce.
    ostrożność! Krople hydroksypropylometylocelulozy są lepkie i mogą powodować problemy z oddychaniem, jeśli dostanie się na skrzela.
  3. Umieść cztery plamki laserowe wokół nerwu wzrokowego na lewym oku i użyj prawego, nieleczonego oka jako kontroli wewnętrznej.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Przygotowanie do indukcji laserowego uszkodzenia siatkówki danio pręgowanego i po analizie OCT. (A) Rozmieszczenie systemu laserowego przed zabiegiem. (A.1) Danio pręgowany umieszczony na silikonowym uchwycie szpilkowym z soczewką kontaktową dna oka założoną tuż przed zastosowaniem wiązki laserowej. (B) Rozmieszczenie systemu KTZ przed ob...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Hydroksypropylometyloceluloza 2%OmniVision, Neuhausen, Szwajcarianie dotyczyMethocel 2%
Metanosulfonian 3-aminobenzoesanu etyluSigma-Aldrich, Buchs, SzwajcariaCiągnik hamulcowy A5040Trikaina, MS-222
Visulas 532sCarl Zeiss Meditec AG, Oberkochen, Niemcynie dotyczyLaser 532 nm
Silikonowy uchwyt na szpilkiHuco Vision AG Szwajcarianie dotyczyOdpowiednio wyciąć ręcznie z silikonowej maty szpilkowej tacki sterylizacyjnej.
Szczep TgBAC (gfap:gfap-GFP) zf167 (AB)KIT, Karlsruhe, NiemcyNumer katalogowy: 15204http://zfin.org/ZDB-ALT-100308-3
Sól fizjologiczna buforowana Tris (TBS)Sigma-Aldrich, Buchs, SzwajcariaZobacz materiał P5912
Soczewka laserowa dna okaInstrumenty okularowe, Bellevue, WA, USAOFA2-0

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Model rybki zebrafishglej Mulleraregeneracja siatk wkikom rki fotoreceptoroweroztw r anestetycznyhydroksypropylometylocelulozasoczewka laserowa do dna okaznieczulenie trikain

Powiązane artykuły