Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Indukcja zapalenia nerwów u myszy poprzez wstrzyknięcie włókien alfa-synukleiny

962 wyświetleń

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Breid, S. et al. Obrazowanie bioluminescencyjne zapalenia układu nerwowego u myszy transgenicznych po obwodowej inokulacji włókienek alfa-synukleinowych. J. Vis. Exp. (2017).

Ten film pokazuje wstrzyknięcie włókienek alfa-synukleiny myszowi w celu wywołania zapalenia nerwów. Włókienka są wstrzykiwane dootrzewnowo transgenicznej myszy wykazującej ekspresję zmutowanych białek alfa-synukleiny. Po dotarciu do ośrodkowego układu nerwowego fibryle wnikają do neuronów i indukują agregację zmutowanych białek. Agregaty rozprzestrzeniają się na sąsiednie neurony, mikroglej i astrocyty. Rozpoznanie agregatów powoduje, że mikroglej indukuje zapalenie nerwów, uszkadzając neurony.

Protokół

Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały sprawdzone przez lokalny komitet ds. opieki nad zwierzętami oraz komisję weterynaryjną JoVE.

1. Model zwierzęcy

  1. Krzyżówka hemizygotycznych myszy Tg (Gfap-luc +/-) (myszy transgeniczne wykazujące ekspresję lucyferazy świetlika) z hemizygoycznymi myszami Tg (M83 +/-) (myszy transgeniczne eksprymujące ludzką alfa-synukleinę z rodzinną mutacją A53T) w celu wytworzenia hemizygotycznych bigenicznych myszy Tg (M83 +/-: Gfap -luc +/-).
  2. Genotyp potomstwa za pomocą reakcji łańcuchowej poliemerazy (PCR) w czasie rzeczywistym na obecność transgenu kodującego ludzką alfa-synukleinę oraz za pomocą standardowej PCR dla lucyferazy świetlika.
  3. Zaszczepić zwierzęta w wieku od sześciu do ośmiu tygodni.

2. Przygotowanie inokulum

  1. Przygotować monomeryczną rekombinowaną ludzką alfa-synukleinę z mutacją A53T w buforze soli fizjologicznej buforowanym trisem (TBS) zawierającym 150 mM NaCl w 20 mM Tris-HCl (pH 7,2).
  2. Przygotować fibrylarną alfa-synukleinę do inokulacji, mieszając 3 μg/μl monomerycznej rekombinowanej ludzkiej alfa-synukleiny w wytrząsarce orbitalnej przy 800 obr./min i temperaturze 37 °C przez 5 dni.
  3. Rozcieńczyć zespoły fibryli w roztworze soli fizjologicznej buforowanym fosforanami (PBS), aby osiągnąć końcowe stężenie 1 μg/μl do inokulacji dootrzewnowych.
  4. Fragmentuj fibryle alfa-synukleiny za pomocą sonikatora pręcikowego przez 1 minutę (40 impulsów o czasie trwania 0,5 s z jednosekundową przerwą między każdym impulsem i amplitudą ustawioną na 50%) na lodzie. Aby uniknąć zanieczyszczenia przez wysiew krzyżowy, należy użyć czystych sond sonicznych do przygotowania różnych inokulum.

3. Iniekcje dootrzewnowe

  1. W przypadku wstrzyknięć dootrzewnowych należy krótko narkotyzować zwierzęta w komorze anestezjologicznej poprzez inhalację izofluranem/tlenem, przy natężeniu przepływu 2 l/min i parowniku ustawionym na 2%. Uszczypnij palec u nogi zwierzęcia i upewnij się, że nie wycofuje tylnej kończyny, aby zapewnić odpowiednie znieczulenie.
  2. Napełnij jednorazową strzykawkę podskórną o pojemności 27 g 50 μl sonikowanych włókien alfa-synukleiny lub PBS.
  3. Należy wstrzykiwać bezpośrednio do otrzewnej myszy i unikać przenikania do jelita cienkiego lub jelita ślepego znajdującego się za ścianą jamy brzusznej, trzymając zwierzę w pozycji grzbietowej z głową skierowaną w kierunku przeciwnym do badacza i w dół pod kątem około 45°. Monitoruj zwierzęta, dopóki nie wyzdrowieją ze znieczulenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Sól fizjologiczna buforowana fosforanami (PBS)Invitrogen14190169
Strzykawka o rozmiarze 27Firma VWRNr kat. 613-4900
IzofluranOpieka zdrowotna PiramalPZN 4831850
Sonikator Sonopuls Mini20Bandelin powiedział:3648
Tg(M83+/-) myszy lub B6; Myszy C3-TG(PrnpSNCA*A53T)83Vle/JLaboratorium JacksonaNumer katalogowy: 4479
TGL

Tagi

Indukcja neurostanu zapalnegoiniekcja doprzewłonowatransgeniczny model mysibariera krew-mózgtransport pęcherzykowyaktywacja mikroglejureaktywne formy tlenuuwalnianie cytokinśmierć komórek neuronalnych