$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały sprawdzone i zatwierdzone przez odpowiedni przegląd etyczny zwierząt.
1. Przygotowanie odczynników
- Bufor wytrawiający (1 ml na półkulę): Rozpuść standaryzowaną mieszaninę oczyszczonych enzymów trawiennych, np. Liberazy o niskim stężeniu termolizyny (TL) do stężenia 2U/ml w zrównoważonym roztworze soli Hanksa (HBSS) zawierającym wapń (Ca) i magnez (Mg).
- Bufor płuczący z DNAzą: Rozpuścić DNAzę I do stężenia 666U/ml w HBSS (bez Ca/Mg (wapń/magnez)) zawierającej 10% płodowej surowicy cielęcej (FCS).
- Bufor płuczący bez DNAzy: HBSS (bez Ca/Mg) zawierający 10% FCS.
- Pożywka o gradiencie gęstości (5 ml na półkulę): przygotować podstawową pożywkę o gradientzie gęstości izotonicznej (SIP; 100%) przez zmieszanie dziewięciu części pożywki o gradionym nasyceniu gęstości z jedną częścią 1,5 M chlorku sodu. Rozcieńczyć SIP do 25% gęstości, dodając odpowiednią objętość HBSS (bez Ca/Mg) zawierającą 3% FCS.
2. Dysocjacja tkanki mózgowej na zawiesiny pojedynczych komórek
- Ostrożnie usuń pień mózgu i móżdżek czystą żyletką. Użyj czystej żyletki, aby przeprowadzić półsekcję mózgu i przeciąć każdą półkulę wzdłuż płaszczyzny koronalnej na trzy części o mniej więcej równej wielkości.
- Zmielić wyciętą tkankę każdej półkuli przez sitko do komórek o wielkości 100 μm za pomocą końcówki tłoka strzykawki o pojemności 5 ml. Sitko do komórek należy w sposób ciągły płukać lodowatym HBSS (+Ca/Mg). Homogenizowane próbki należy przechowywać na lodzie.
- Wirować w temperaturze 286 x g i temperaturze 4°C przez 5 minut, ostrożnie wyrzucić supernatant. Zawiesić osad w 1 ml buforu do wytrawiania i przenieść zawiesinę do probówki o pojemności 2 ml. Inkubować zawiesinę przy powolnych, ciągłych obrotach w temperaturze 37 °C przez 1 godzinę.
- Przesiać zawiesinę komórkową przez sitko o wielkości 70 μm i dokładnie spłukać 3 ml buforu płuczącego zawierającego DNAzę, a następnie 15 ml buforu płuczącego niezawierającego DNAzy. Wirować w temperaturze 286 x g i temperaturze 18 °C przez 5 minut i odrzucić supernatant. nuta: Zastosowanie DNAzy eliminuje śluz DNA spowodowany lizą komórek, co może prowadzić do agregacji komórek, zagrażając przeżyciu komórek.
3. Wirowanie w gradiencie gęstości w celu usunięcia mieliny i resztek komórek
- Zawiesić osad komórek w 5 ml pożywki o gradiencie gęstości 25% i odpipetować zawiesinę do probówki o pojemności 15 ml. Dokładnie wymieszać przez wielokrotne i delikatne pipetowanie, unikając tworzenia się pęcherzyków. nuta: W temperaturze pokojowej należy stosować podłoże o gradiencie gęstości, aby zapobiec zbrylaniu się komórek.
- Wirować przy 521 x g i temperaturze 18 °C przez 20 minut. Użyć najniższego profilu przyspieszenia wirnika i pozwolić, aby wirnik zatrzymał się bez hamulca. Delikatnie wyjmij probówki z wirówki, nie potrząsając. Ostrożnie odessać płaszcz mielinowy i supernatant, zachowując osad komórkowy na dnie probówki. nuta: Upewnij się, że usunąłeś cały płaszcz mielinowy, ponieważ wszelkie pozostałości zaburzą analizę cytometrii przepływowej.
- Zawiesić osad w 10 ml buforu płuczącego niezawierającego DNA i odpipetować zawiesinę do nowej probówki o pojemności 15 ml. nuta: Ten etap mycia ma kluczowe znaczenie, ponieważ wystarczające usunięcie podłoża o gradiencie gęstości znacząco wpływa na ilość i jakość końcowej próbki komórki.
- Ponownie odwirować w temperaturze 286 x g i temperaturze 10 °C przez 5 minut i odrzucić supernatant. Zawiesić komórki w 100 μl buforu do płukania na zimno i określić liczbę komórek i żywotność przez wykluczenie błękitu trypanowego w hemocytometrze. Próbki należy przechowywać w temperaturze 4 °C i szybko je przetwarzać.