Artykuł metodologiczny

Ustalenie ogniskowego modelu myszy demielinizacji poprzez dwupunktowe wstrzyknięcie lizofosfatydylocholiny

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Pang, X., et al. Stabilnie ustaloną dwupunktową iniekcję modelu ogniskowej demielinizacji indukowanego lizofosfatydylocholiną u myszy. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film przedstawia generowanie ogniskowego modelu myszy demielinizacji przy użyciu dwupunktowego wstrzyknięcia lizofosfatydylocholiny (LPC). Czaszka znieczulonej myszy jest odsłonięta. Określane są współrzędne iniekcji i wiercony jest otwór, aby umożliwić wstrzyknięcia LPC w docelowych miejscach. LPC indukuje ogniskową demielinizację neuronów poprzez stan zapalny, podczas gdy dwupunktowe wstrzyknięcie zapewnia jego trwałość.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Przygotowanie roztworu lizofosfatydylocholiny (LPC)

  1. Rozpuścić 25 mg proszku LPC (patrz Tabela materiałów) w 250 μl zmieszanego roztworu chloroformu i metanolu (1:1) w celu uzyskania 10% roztworu LPC i przenieść go do probówki wirówkowej o pojemności 500 μl.
    UWAGA: Jeśli LPC nie jest całkowicie rozpuszczony, umieść probówkę wirówkową w myjce ultradźwiękowej i ultradźwięki pod ciśnieniem 40 kHz przez ~1 h, aby uzyskać jednolity roztwór.
  2. Podzielić roztwór na 3 μl/probówkę i przechowywać w temperaturze -80 °C.
    UWAGA: Roztwór może być przechowywany przez ~2 lata.
  3. Przed zabiegiem należy rozcieńczyć roztwór (krok 1.2) 27 μl 0,9% roztworu chlorku sodu (NaCl) i przechowywać roztwór w łaźni wodnej o stałej temperaturze 37 °C.
    UWAGA: Przygotuj roztwór tuż przed rozpoczęciem wstrzyknięcia.

2. Przygotowanie chirurgiczne

  1. Użyj igły o wadze 32 G, 2 cale, aby połączyć się ze strzykawką o pojemności 5 μl (patrz Tabela materiałów). Upewnij się, że strzykawka z mikrolitrami jest drożna. Pobrać 5 μl roztworu LPC w celu przygotowania wstrzyknięcia.
  2. Znieczulenie myszy w komorze indukcyjnej podłączonej do parownika izofluranu z 3% izofluranem zmieszanym ze 100% tlenem z szybkością około 0,3 l/min.
  3. Potwierdź głębokość znieczulenia poprzez brak odruchu szczypania palców u stóp, gdy oddech jest płynny.
  4. Ogol głowę myszy między uszami za pomocą golarki elektrycznej. Zastosuj nawilżające krople do oczu, aby zapobiec wysuszeniu rogówki podczas zabiegu.
  5. Następnie ustaw mysz w ramce stereotaktycznej (patrz Tabela materiałów) grzbietem do góry i zabezpiecz głowę stożkiem nosowym i zaciskiem zębowym. Utrzymuj znieczulenie z 1,2%-1,6% izofluranem przez nos.
    UWAGA: Stężenie izofluranu można dostosować do stanu oddechowego myszy.

3. Zabieg chirurgiczny

UWAGA: Zwierzęta są umieszczane na poduszce grzewczej podczas wszystkich zabiegów.

  1. Przymocuj mysz do aparatu stereotaktycznego za pomocą obustronnych nauszników. Upewnij się, że nauszniki są wypoziomowane, a głowa jest pozioma i stabilna.
  2. Zdezynfekuj skórę na głowie, przecierając ją kilkakrotnie jodoforem, a następnie alkoholem okrężnymi ruchami. Następnie skalpelem wycina się małe nacięcie o długości około 1,5 cm wzdłuż linii środkowej skóry głowy, aby odsłonić czaszkę.
  3. Przetrzyj czaszkę bawełnianym wacikiem zamoczonym w 1% nadtlenku wodoru, aż bregma, lambda i tylne ciemiączko zostaną odsłonięte. Umieścić strzykawkę na aparacie stereotaktycznym.
    UWAGA: Używaj wody utlenionej ostrożnie i unikaj dotykania otaczających tkanek.
  4. Upewnij się, że głowa zwierzęcia jest ułożona w poziomie (zarówno przód, jak i tył oraz lewo i prawo).
    1. Wyreguluj pokrętło osi Z ramy stereotaktycznej tak, aby końcówka igły i czaszka po prostu stykały się bez zginania, a następnie zmierz współrzędną osi Z. Sprawdź współrzędne Z bregmy i ciemiączka tylnego.
    2. Wyreguluj listwę douszną tak, aby różnica między współrzędnymi Z bregmy i ciemiączka tylnego nie przekraczała 0.02 mm. Następnie postępuj zgodnie z tą samą metodą, aby zmierzyć współrzędne Z odpowiednich pozycji po lewej i prawej stronie linii środkowej. Wyreguluj pasek douszny, aby upewnić się, że lewy i prawy są na tym samym poziomie.
  5. Zlokalizuj ciało modzelowate. Ustaw początek układu współrzędnych XYZ na bregma.
    UWAGA: Pierwsze miejsce wstrzyknięcia znajduje się 1,0 mm bocznie do bregmy, 2,4 mm głębokości i 1,1 mm z przodu. Drugie miejsce wstrzyknięcia znajduje się 1,0 mm bocznie w stosunku do bregmy, na głębokości 2,1 mm i 0,6 mm z przodu. Na przykład współrzędna bregmy to (0,0,0). Zmierz współrzędną Z odpowiedniego położenia oznaczonego jako (-1, 1.1, X) i (-1, 0.6, Y). Można określić współrzędną pierwszego miejsca wstrzyknięcia ciała modzelowatego (-1, 1,1, −[X + 2,4]), a drugiego miejsca wstrzyknięcia (-1, 0,6, −[Y + 2,1]).
  6. Po ustaleniu miejsca wstrzyknięcia należy wykonać na czaszce znak sterylnym markerem i zapisać współrzędne.
  7. Delikatnie przewierć oznaczone miejsce wiertłem do czaszki (patrz Tabela materiałów). Należy uważać, aby uniknąć krwawienia.
  8. Powoli przesunąć igłę do podanych współrzędnych i rozpocząć wstrzykiwanie. Aby wywołać demielinizację ciała modzelowatego, wstrzyknąć 2 μl roztworu LPC (krok 1.2) w każde miejsce wstrzyknięcia (krok 3.5.) z szybkością 0,4 μl/min.
  9. Po wstrzyknięciu należy trzymać igłę w każdym miejscu przez dodatkowe 10 minut.
    UWAGA: Upewnij się, że odstęp między dwoma wstrzyknięciami nie przekracza 20 minut.
  10. Zszyj skórę szwem 4-0 i poczekaj, aż zwierzę obudzi się w ciągu 10 minut. Leki przeciwbólowe należy podawać pooperacyjnie zgodnie z instytucjonalnymi przepisami dotyczącymi opieki nad zwierzętami.
    UWAGA: Zalecany czas eutanazji można określić w zależności od celu eksperymentu.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
L-α-lizofosfatydylocholina z żółtka jajaSigma-AldrichL4129-25MG
Igła o rozmiarze 32HAMILTON7762-05
10 μl strzykawkaHAMILTON80014
Szybkobieżna wiertarka do czaszkistrong,koreastrong204
WiercićHager & Meisinger, NiemcyNR KAT. 500 104 001 001 005
Wentylator Matrx Animal AneathesiaZNAK ŚRODKOWYVMR
Przenośny instrument stereotaktyczny do myszyNagroda68507
MikrostrzykawkaNagrodaKDS LEGATO 130
IzofluranVETEASY
SzewFUSUNPHARMA20152021225
Dorosłe myszy C57BL/6 płci męskiej i żeńskiejHunan SJA Laboratory Animal Co. Ltd

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Wstrzykni cie lizofosfatydylocholinyaparat stereotaktycznycia o modzelowatewiercenie czaszkiwstrzykni cie do m zgumodel demielinizacjiznieczulona mysz

Powiązane artykuły