Artykuł metodologiczny

Badanie migracji limfocytów przez monowarstwę komórek śródbłonka mikronaczyniowego

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Schulte-Mecklenbeck, A., i inni., Analiza wynaczynienia limfocytów przy użyciu Model in vitro { ludzkiej bariery krew-mózg. J. Vis. Exp. (2017)

Ten film przedstawia eksperymentalne badanie transmigracji limfocytów przez model śródbłonka bariery krew-mózg (BBB). Monowarstwa komórek śródbłonka mikronaczyniowego ludzkiego mózgu (HBMEC) jest generowana in vitro, a komórki jednojądrzaste krwi obwodowej (PBMC) zawierające limfocyty są dodawane do monowarstwy. Komórki są następnie inkubowane, aby umożliwić transmigrację limfocytów, a migrowane komórki są oznaczane ilościowo za pomocą cytometrii przepływowej.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Przygotowanie wkładek do hodowli komórkowych

  1. Powlekanie wkładek do hodowli komórkowych
    Ważna uwaga: Unikaj dotykania błony wkładek do hodowli komórkowych.
    1. Dodaj 100 μl roztworu fibronektyny do każdej wkładki do hodowli komórkowej (Rysunek 1A) i jednego dołka 96-dołkowej płytki z płaskim dnem (studzienka kontroli optycznej). Inkubować przez co najmniej 3 godziny w temperaturze 37 °C. Po inkubacji odessać roztwór fibronektyny.
    2. Dodać 100 μl zawiesiny HBMEC do wkładek do hodowli komórkowych i studzienki kontroli optycznej. Dodać 600 μl pożywki średnio-bazalnej komórek śródbłonka (ECM-b) do dolnego przedziału wkładek do hodowli komórkowych. Inkubować przez 3 - 4 dni w temperaturze 37 °C / 5% CO2 aż do osiągnięcia integralności bariery (Rysunek 1B), sprawdzić wzrost komórek za pomocą mikroskopowej oceny HBMEC w studzience kontroli optycznej.
      Uwaga: Wzrost komórek powyżej czterech dni nie jest zalecany.

2. Test migracji

  1. Przygotowanie komórek jednojądrzastych krwi obwodowej (PBMC).
    1. Dodać 10 ml pożywki Roswell Park Memorial Institute (RPMI) do 15 ml probówki wirówkowej i dodać 200 μl suplementu B27. Liczyć PBMC i odwirować komórki w stężeniu 300 x g przez 5 min. Ponownie zawiesić PBMC do końcowego stężenia 5 x 106 komórek/mL RPMI/B27.
  2. Przygotowanie testu migracji
    1. Odessać pożywkę z dolnej komory, a następnie górną komorę wkładek do hodowli komórkowych zawierających zlewające się monowarstwy HBMEC (Rysunek 1A). Na dawcę dodać po 100 μl zawiesiny PBMC do wkładek do hodowli komórkowych, a także do jednego dołka na 24-dołkowej płytce na ( in vitro kontrola).
    2. Dodać 600 μL RPMI/B27 do dolnej komory wkładek do hodowli komórkowych i 500 μL do PBMC kontroli in vitro i inkubować 6 godzin w temperaturze 37 °C / 5% CO2.
  3. Odławianie migrowanych PBMC
    1. Wyjąć wkładkę do hodowli komórkowej za pomocą kleszczy i ostrożnie przepłukać dno 400 μl soli fizjologicznej buforowanej fosforanami (PBS), nie dotykając membrany. Wyrzuć wkładkę do hodowli komórkowej.
    2. Dodać 20 μl fluorosfer zliczających przepływ (około 1,000 kulek/μl) do dolnej komory wkładki do hodowli komórkowej, a także do kontroli in vitro i dobrze wymieszać. Przenieść 1 ml otrzymanej zawiesiny PBMC do probówek do cytometrii przepływowej.

3. Cytometria przepływowa

  1. Przygotowanie próbki
    1. Odwirować PBMC przy 300 x g przez 5 minut w temperaturze pokojowej.
    2. Przygotować roztwór przeciwciała, dodając przeciwciała sprzężone z fluorochromem do 100 μl buforu cytometrii przepływowej (PBS/1% albuminy surowicy bydlęcej [BSA]/2 mM kwasu etylenodiaminotetraoctowego [EDTA]) na próbkę. Dla wyników przedstawionych poniżej użyto 1 μL CD4-FITC (klaster różnicowania izotiocyjanianu 4-fluoresceiny), 1 μL CD3-PerCP/Cy5,5 (białko chlorofilu perydyny/cyjanina 5,5), 1 μl CD56-PC7 (cyjanina fikoerytryny 7), 1 μl CD8-A700 (Alexa fluor 700) i 1 μl CD16-A750 (Alexa fluor 750).
    3. Ponownie zawiesić PBMC w 100 μl roztworu przeciwciała i inkubować przez 30 minut w temperaturze 4 °C.
    4. Dodać 250 μl buforu do cytometrii przepływowej i odwirować przy 300 x g przez 5 minut.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rycina 1: Zróżnicowana migracja podzbiorów komórek NK przez monowarstwy HBMEC bez stanu zapalnego i zapalnego. A. Zdjęcie wkładek transwell (po lewej) i ilustracja układu eksperymentalnego (po prawej). B. Walidacja funkcji bariery HBMEC. Po lewej: barwienie immunohistochemiczne cząsteczki ścisłego połączenia ZO-1 przy użyciu króliczej anty-ludzkiej zonuli occludens-1 (ZO-1, abcam, 1:...

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
PBSGibco14190-094bez CaCl2 lub MgCl2
Fibronektyna 1mg/mLSigmaF1141-5MGz osocza bydlęcego
HBMECScienCell1000
HBMECPelobiotechPB-H-6023
ECM-bScienCell1001-b
FBSScienCell1001-b
Penicylina/StreptomycynaScienCell1001-b
Suplement na wzrost komórek śródbłonkaScienCell1001-b
TranswellCorning3472przezroczysty, średnica 6,5 mm, wielkość porów 3,0 μm
96-dołkowa płaska płyta dennaCorning3596
B27Gibco17504-04450x skoncentrowany
Płytka 48-dołkowaCorning3526
RPMI 1640Gibco61870-010
Liczba przepływów FluorosferyBeckman Coulter7547053
Na-EDTASigmaE5134
BSASigmaA2153
CD3-PerCP/Cy5.5Legenda biologiczna300430klon UCHT1
CD56-PC7Beckman CoulterA21692klon N901
CD16-A750Beckman CoulterA66330klon 3G8
CD4-FITCLegenda biologiczna300506klon RPA-T4
CD8-A700Beckman CoulterA66332klon B9.11

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Bariera krew m zgmononuklearne kom rki krwi obwodowejcytometria przep ywowainserty Transwellhodowla kom rkowafluorescencyjne mikrokulkiznakowanie przeciwcia amikwantyfikacja kom rek

Powiązane artykuły