Artykuł metodologiczny

Oznaczanie zdolności zatrzymywania wapnia w izolowanych mitochondriach

8 lipca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Li, W., et. al. Test zdolności zatrzymywania Ca2+ w mitochondriach i test obrzęku mitochondriów wywołany Ca2+. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film przedstawia procedurę oceny zdolności mitochondriów do zatrzymywania wapnia poprzez monitorowanie zmian fluorescencji w czasie rzeczywistym w miarę wychwytu wapnia przez mitochondria. Ten test jest przydatny do badania funkcji mitochondriów i procesów związanych z wapniem, w tym apoptozy i chorób neurodegeneracyjnych.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Oznaczanie zdolności retencji mitochondriów Ca2+

  1. Przygotować pożywkę KCl (125 mM KCl (chlorek potasu), 2 mM K2HPO4 (fosforan dipotasowy), 1 mM MgCl2 (chlorek magnezu), 20 mM HEPES (kwas 2-[4-(2-hydroksyetylo)piperazyno-1-ylo]etanosulfonowy), 5 mM glutaminianu, 5 mM jabłczanu i 2 μM rotenonu, pH 7,4) i dodać Ca2+ wiążący zielony barwnik fluorescencyjny do końcowego stężenia 0,5 μM przed eksperymentem.
  2. Przenieś 1 ml izolowanych mitochondriów (0,4 mg/ml) w pożywce KCl zawierającej 0,5 μM Ca2+-wiążący zielony barwnik fluorescencyjny do każdej 6-dołkowej płytki.
  3. Inkubować mitochondria i wiążący Ca2+ wiążący zielony barwnik fluorescencyjny na 6-dołkowej płytce w temperaturze pokojowej, chroniony przed światłem otoczenia przez 1 minutę. Dodać 4 μl podwielokrotności 20 mM roztworu CaCl2 (chlorek wapnia) (20 mM CaCl2, 127 mM KCl, 1 mM MgCl2, 20 mM HEPES, 5 mM glutaminianu, 5 mM jabłczanu, pH 7,4) do każdej 6-dołkowej płytki, korzystając z automatycznego ustawienia dozowania, aby wprowadzić 200 nmol Ca2+/mg białka mitochondrialnego.
  4. Użyj spektrometru fluorescencyjnego, aby monitorować zmiany fluorescencji co 3 s przez 2 minuty przy długości fali wzbudzenia 506 nm i długości fali emisji 531 nm. Płytka wyposażona jest w wytrząsanie z prędkością 600 obr./min przez 3 s pomiędzy odczytami sterowanymi oprogramowaniem (Rysunek 1).
  5. Dodać dodatkowe 4 μl podwielokrotności 20 mM roztworu CaCl2 do każdej studzienki i monitorować zmiany fluorescencji co 3 s przez 2 min. Powtarzaj ten krok, aż fluorescencja wzrośnie z czasem.
    UWAGA: Mitochondria są prowokowane dodanym Ca2+ wskazanym przez zwiększoną zapisaną fluorescencję. Kiedy otwiera się mPTP (por przejściowy przepuszczalności mitochondriów), fluorescencja wzrasta z czasem.
  6. Zinterpretuj całkowitą ilość Ca2+ dodaną do momentu otwarcia mPTP jako zdolność przechowywania Ca2+.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

figure-results-1
Rysunek 1: Ustawienia oprogramowania do testu zdolności zatrzymywania mitochondriów Ca2+.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Oświadczenia

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
Nie stwierdzono konfliktu interesów.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Zieleń wapniowa-5NTechnologie życiac-3737Zielony barwnik fluorescencyjny wiążący wapń
GlutaminianSigma-AldrichRES5063G-A7
MalateSigma-Aldrich46940-U
RotenonSigma-AldrichR8875
HEPESSigma-AldrichH3375
Chlorek magnezuSigma-Aldrich457
Fosforan dipotasowySigma-AldrichV900050
KClSigma-AldrichP9541
Chlorek wapniaSigma-AldrichV900266

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

retencja wapnia w mitochondriachbarwnik wi cy wapspektrometr fluorescencyjnymitochondrialny kana przej cia przepuszczalno cipobieranie wapnia przez mitochondriamonitorowanie fluorescencji w czasie rzeczywistymizolacja mitochondri wroztw r chlorku wapniapo ywka z chlorkiem potasumitochondria neuroblastoma

Powiązane artykuły