Artykuł metodologiczny

Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą jonoforezy barwnika fluorescencyjnego w nieruchomym wycinku mózgu myszy

29 maja 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Moye, S. L., et.al. Wizualizacja morfologii astrocytów za pomocą żółtej jonoforezy Lucyfera. J. Vis. Exp. (2019).

Ten film demonstruje zastosowanie jonoforezy barwnika fluorescencyjnego do badania morfologii astrocytów w utrwalonych wycinkach mózgu. Szczegółowo opisuje przekłuwanie somy astrocytów elektrodą w celu dostarczenia anionowego, hydrofilowego barwnika do cytoplazmy pod prądem o niskim napięciu, umożliwiając barwnikowi dyfuzję i znakowanie somy i gałęzi. Mikroskopia konfokalna jest następnie wykorzystywana do wizualizacji znakowanych astrocytów, dostarczając wglądu morfologicznego.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały poddane przeglądowi i zatwierdzone przez odpowiednią komisję ds. oceny etycznej zwierząt.

1. Napełnianie astrocytów jonoforezą

  1. Przetestuj elektrodę.
    1. Delikatnie umieść plasterek mózgu w naczyniu ze szklanym dnem wypełnionym 0,1 M PBS w temperaturze pokojowej. Przytrzymaj plasterek na miejscu za pomocą platynowej harfy z nylonowymi strunami.
    2. Upewnij się, że elektroda jest podłączona do źródła napięcia i umieść elektrodę uziemiającą w kąpieli zawierającej wycinek mózgu.
    3. Przenieś cel do obszaru mózgu, który Cię interesuje.
    4. Opuść elektrodę do roztworu. Pod jasnym polem przesuń go na środek pola view i dokładnie zbadaj go za pomocą 40-krotnej soczewki zanurzonej w wodzie, aby upewnić się, że jest czysty i bez zanieczyszczeń i pęcherzyków. Jeśli coś zatka końcówkę elektrody, wymień ją na nową.
      UWAGA: Zatkanie jest problemem dla elektrody 200 MΩ. Przy odwirowaniu i filtracji roztworu barwnika przed każdym eksperymentem nie powinno to być częstym problemem. Ponieważ jednak końcówka elektrody jest mała, tkanka może czasami utknąć w otworze. Autorzy nie znaleźli sposobu, aby temu zapobiec, ale można sobie z tym łatwo poradzić, po prostu używając nowej elektrody.
    5. Pod jasnym polem powoli opuść elektrodę w kierunku warstwy, zatrzymując się tuż nad powierzchnią.
  2. Wypełnij astrocyt jonoforezą.
    1. Zidentyfikuj astrocyty 40−50 μm poniżej powierzchni wycinka za pomocą kontrastu różnicowego interferencji w podczerwieni (IR-DIC). Szukaj komórek z wydłużonymi, owalnymi somatami o średnicy około 10 μm. Po wybraniu astrocytu przesuń go na środek pola widzenia.
      UWAGA: Dobra komórka do jonoforezy ma wokół siebie wyraźne, wyraźne granice. Nie wybieraj komórek zbyt blisko powierzchni plasterka, ponieważ nie można ich całkowicie wypełnić. Potrzeba trochę praktyki w ciągu kilku dni, aby móc rutynowo identyfikować astrocyty do wypełnienia barwnikiem. W zależności od obszaru mózgu użytego w eksperymencie, liczba astrocytów może się różnić. Może to wpłynąć na czas potrzebny do zidentyfikowania astrocytu przed wypełnieniem.
    2. Powoli opuść końcówkę elektrody do wycinka, poruszając się po tkance, aż znajdzie się na tej samej płaszczyźnie co ciało komórki.
      UWAGA: Przesuwaj elektrodę powoli, aby uniknąć uszkodzenia tkanki.
    3. Gdy ciało komórki astrocytu jest wyraźnie widoczne i zarysowane, powoli i delikatnie przesuwaj elektrodę do przodu. Przesuwaj elektrodę, aż końcówka przebije somę ogniwa. Powoli przesuwaj ostrość obiektywu w górę iw dół, aby zauważyć, czy elektroda znajduje się wewnątrz somy.
      UWAGA: Końcówka elektrody musi znajdować się wewnątrz korpusu komórki i należy zwrócić uwagę na małe wgłębienie na somie. Nie przesuwaj elektrody dalej, aby uniknąć przechodzenia końcówki przez ogniwo.
    4. Gdy końcówka elektrody znajdzie się wewnątrz ogniwa, włącz stymulator przy napięciu ~0,5−1 V i w sposób ciągły wyrzucaj prąd do ogniwa. Za pomocą mikroskopu konfokalnego obserwuj, jak komórka się wypełnia. Zwiększ zoom cyfrowy, aby zobaczyć szczegóły ogniwa i upewnij się, że końcówka elektrody jest widoczna wewnątrz ogniwa.
      UWAGA: Zmniejsz napięcie, jeśli wydaje się, że barwnik wycieka z ogniwa lub wypełnia inne komórki w pobliżu. Jeśli wydaje się, że barwnik nadal wycieka z ogniwa, powoli wyciągnij elektrodę i znajdź inne ogniwo. Ważne jest, aby barwnik nie przeciekał, aby uzyskać wysoki stosunek sygnału do tła na końcowym obrazie.
    5. Odczekaj około 15 minut, aż drobniejsze gałęzie i procesy pojawią się zdefiniowane, wyłącz napięcie i delikatnie wyjmij końcówkę elektrody z ogniwa.
  3. Zobrazuj wypełnioną komórkę.
    UWAGA: Obrazowanie można wykonać natychmiast po wypełnieniu. Obiektyw z większą aperturą numeryczną (NA) zapewnia lepszą rozdzielczość.
    1. Poczekaj, aż komórka powróci do swojej pierwotnej postaci przed obrazowaniem (15−20 min) za pomocą obiektywu 40x. Aby zobrazować komórkę, dostosuj ustawienie konfokalnej, aby upewnić się, że drobniejsze gałęzie i procesy wydają się zdefiniowane.
    2. Skonfiguruj stos z krokiem o rozmiarze 0,3 μm. Podczas obrazowania przesuwaj obiektyw, aż nie będzie sygnału z komórki i ustaw go jako górę. Następnie przesuń obiektyw w dół (skupiając się przez komórkę), aż nie będzie sygnału, ustaw go jako dół.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Pipety ze szkła borokrzemianowego z żarnikiemŚwiatowe instrumenty precyzyjne1B150F-4
Konfokalny laserowy mikroskop skaningowyOlympusFV1000MPEPodobną alternatywę można zastosować
Oprogramowanie Imaris (wersja 7.6.5)Bitplane Inc.Podobną alternatywę można zastosować
Lucyfer Żółta sól dilitowa CHSigmaL0259
Lucyfer Żółta sól dipotasowa CHSigmaL0144
Soczewka obiektywowa (40x)OlympusLUMPLFLN 40XWPodobną alternatywę można zastosować
Soczewka obiektywowa (60x)OlympusPlanAPO 60XPodobną alternatywę można zastosować
Tabletki PBS, 100 mlVWRVWRVE404Można zastosować identyczną alternatywę
Mikromanipulator do pipet- Model ROE-200Sutter MP-285 / ROE-200 / MPC-200Podobną alternatywę można zastosować
Chlorek potasuSigmaP3911Identyczną alternatywę można zastosować
Stymulator- Model Omnical 2010Światowe instrumenty precyzyjneOmnical 2010Podobną alternatywę można zastosować

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Mikroskopia konfokalnaLucifer Yellowprzebijanie elektroddyfuzja cytoplazmatycznaobrazowanie Z stackpodczerwony DICprzygotowanie tkanki m zgowej

Powiązane artykuły