Wszystkie procedury dotyczące modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.
1. Przygotowanie myszy
- Rozszerzenie i unieruchomienie oczu
- Przynajmniej 15 minut przed pozyskaniem danych wkrać 10% kropli do oczu fenylefryny do oczu myszy, usuń nadmiar, i wkraplania 0,5% tropikamidowych kropli do oczu.
UWAGA: Pierwszą dylatację można wykonać od razu dla wszystkich myszy, które będą testowane podczas sesji. Upewnij się, że płyny mają temperaturę pokojową. - Natychmiast po wywołaniu znieczulenia ogólnego (krok 1.2) należy podać 0,4% krople do oczu z chlorowodorkiem oksybuprokainy, utrzymując je na miejscu przez 3 sekundy w celu znieczulenia i unieruchomienia oczu. Następnie zetrzyj krople i powtórz wkraplanie 10% fenylefryny i 0,5% tropikamidu, aby upewnić się, że oczy są dobrze rozszerzone.
UWAGA: Upewnij się, że płyny mają temperaturę pokojową i że mysz nie połyka oksybuprokainy.
- Znieczulenie ogólne
- Przygotuj znieczulający roztwór ketaminy (20 mg/ml) i ksylazyny (1,17 mg/ml) w soli fizjologicznej. Przechowywać w temperaturze 4 °C maksymalnie 2 tygodnie.
- Około 5 minut przed badaniem wstrzyknąć dootrzewnowo 5 - 10 μl roztworu znieczulającego na 1 g masy ciała, w zależności od wieku i wielkości myszy.
UWAGA: Młode i/lub chude myszy potrzebują mniej znieczulenia, potrzebują mniej czasu na znieczulenie, ale także szybciej się budzą. Tutaj 8 μl/g (160 mg/kg ketaminy, 9,33 mg/kg ksylazyny). - Opcjonalnie nasmaruj oczy lepkimi kroplami do oczu lub żelem okulistycznym, aby uniknąć wysuszenia rogówki.
2. Pozycjonowanie myszy
- Nasmaruj oczy lepkimi kroplami do oczu na bazie glikolu, aby zapewnić nawilżenie rogówki.
UWAGA: Jeśli oczy wydają się suche podczas badania, ponownie nałóż krople do oczu. - Owiń mysz w arkusz gazy chirurgicznej, aby utrzymać ją w cieple.
- Za pomocą gąbki lub bawełnianego knota nałóż cienką warstwę żelu okulistycznego z 0,3% hypromelozą na każde oko, aby zminimalizować załamanie światła, uniknąć zmętnienia i zapewnić nawilżenie rogówki. Robiąc to, odsuń rzęsy i wąsy na bok.
- Umieść mysz w kasecie, z głową wyprostowaną i skierowaną do przodu.
- Delikatnie otwórz zacisk pręta do gryzienia i umieść pręt w ustach; Użyj opaski na nos, aby zabezpieczyć pozycję.
UWAGA: Upewnij się, że belka gryząca znajduje się na środku kasety. - Umieść bawełnianą rolkę pod prawą (lewą) stroną, jeśli badane jest prawe (lewe) oko.
- Trzymając przypinaną końcówkę celowniczą na soczewce specyficznej dla myszy, przyłóż ją do oka, obracając śrubę Z-translator w kierunku przeciwnym do ruchu wskazówek zegara.
- Obracając i obracając kasetę oraz obracając listwę zgryzową i śruby X-translator, ustaw wstępnie pozycję myszy; Celem jest, aby prawe oko patrzyło bezpośrednio w soczewkę, a tym samym wyrównało osie optyczne oczu i soczewki.
UWAGA: Jeśli mysz jest zbyt wysoko lub zbyt nisko, należy najpierw użyć śruby Y-translator. - Wybierz pierwszy skan w "Badaniu", kliknij "Rozpocznij celowanie" i dokonaj dalszych ręcznych korekt obrazowania siatkówki.
- Za pomocą śruby Z-translator przesuń siatkówkę pionowo na lewym panelu (Rysunek 1, Wyrównanie poziome B-scan) i poziomo na prawym panelu (Rysunek 1, Wyrównanie w pionie B-scan).
- Obróć kasetę, aby przesunąć ONH na środek prawego panelu, przesuwając ONH w górę lub w dół. Użyj śruby pręta gryzowego, aby wyprostować siatkówkę na prawym panelu. Obróć kasetę, aby ustawić ONH na środku lewego panelu.
- Użyj śruby X-translator, aby wypoziomować siatkówkę na lewym panelu. Mając na uwadze główną funkcję każdego modulatora, należy dodatkowo dostosować położenie siatkówki, aby scentralizować ONH.
UWAGA: Użyj śruby Y-translator, aby przesunąć ONH w górę iw dół na prawym panelu, jeśli to konieczne. Pozycja może zostać poprawiona w dowolnym momencie między skanowaniami.
3. Obrazowanie SD-OCT ONH i siatkówki
- Po uzyskaniu ustawień kliknij "Rozpocznij migawkę", aby rozpocząć skanowanie SD-OCT.
- Jeśli obrazowanie 3D nie jest wymagane, odznacz opcję OCU.
- Zapisz skan i raport.
- Kontynuuj kolejne skanowania.
- Aby zobrazować drugie oko, po schowaniu soczewki należy odpowiednio obrócić kasetę i powtórzyć kroki 2.6 - 3.3.
4. Zakończenie akwizycji
- Gdy akwizycja zostanie zakończona, wyjmij mysz z kasety, nałóż żel okulistyczny z 0,3% hypromelozą na każde oko i umieść mysz na płycie grzewczej, aby się obudzić.
- Po ostatnim pobraniu zamknij oprogramowanie i wyłącz komputer oraz maszynę OCT (przycisk zasilania).
- Wyczyść kasetę środkiem dezynfekującym.
5. Analiza
- Do pomiaru grubości warstwy siatkówki należy skorzystać z oprogramowania do automatycznej segmentacji dostarczonego przez producenta.
- Kliknij "Pacjent", wybierz żądany "Egzamin" z listy i kliknij opcję "Przegląd egzaminu".
- Załaduj żądane dane OCT do oprogramowania OCT, klikając prawym przyciskiem myszy ikonę folderu w żądanym skanowaniu.
- Kliknij prawym przyciskiem myszy B-scan; skonfigurować suwmiarki, włączając do 10 suwmiarek pomiarowych; i wprowadź ich nazwy, kąty i kolory.
- Wybór żądanej suwmiarki poprzez kliknięcie prawym przyciskiem myszy B-scan; Umieść go odpowiednio na siatkówce w celu pomiaru.
UWAGA: W przypadku skanów wyśrodkowanych na ONH ustaw 5 suwmiarek po każdej stronie, w równej odległości od siebie. W przypadku analizy obwodowo-brodawkowej upewnij się, że suwmiarka nie jest umieszczona zbyt daleko od ONH. W przypadku skanowania promieniowego przeanalizuj 10 zdjęć na skan, które zostały wybrane przez oprogramowanie OCT. Ich numery znajdują się w folderze "Raporty". - Zapisz wyniki do analizy w arkuszu kalkulacyjnym, klikając prawym przyciskiem myszy B-scan i klikając "Zapisz wyniki".
UWAGA: Wyniki można znaleźć w tym samym folderze, co dane skanowania.
- Alternatywnie można użyć domowego makra suwmiarki "MRI Retina Tool", opracowanego dla programu do przetwarzania obrazów o otwartym kodzie źródłowym (patrz tabela materiałów).
- Upewnij się, że makra "MRI Retina Tool" i "Modify Polygon Section Tool" są aktywne. Załaduj obraz. Kliknij przycisk m, aby rozpocząć pomiar.
UWAGA: Makro automatycznie tworzy jedną kasetę pomiarową o długości 0,2 mm po obu stronach ONH. Każda kaseta zawiera 5 punktów pomiarowych, które pełnią funkcję suwmiarki. Ich pozycja boczna jest niezmienna i jest dostosowana do okołobrodawki w skanach promieniowych. Pozycja pozioma kaset jest wstępnie zdefiniowana do pomiaru grubości RNFL/GCL, ale można ją łatwo zmodyfikować, aby zamiast tego zmierzyć warstwę zespoloną GC. Jeśli jakość skanowania jest niska, należy dostosować pozycję poziomą lub wykluczyć obraz z analizy. - Aby dostosować się w poziomie, kliknij przycisk e. W nowo otwartym oknie "ROI Manager" wybierz pierwszą kasetę.
- Kliknij niebieski przycisk wielokąta i dostosuj położenie pierwszej kasety, klikając obramowania mierzonej warstwy na obrazie.
- Powtórz dla drugiej kasety, najpierw wybierając ją w oknie "Menedżer ROI", a następnie klikając odpowiedni obraz. Kliknij przycisk r, aby ponownie zmierzyć. Wyświetl wyniki w oknie "Pomiary".
UWAGA: Wyniki można w każdej chwili skopiować do arkusza kalkulacyjnego. Zawierają one następujące wartości dla prawej kasety (r), lewej kasety (l) i sumy: Intden - gęstość zintegrowana w kasecie; Powierzchnia: obszar pomiaru, w mm2; Len: długość zacisku w kasecie, w mm; Średnia: średnie natężenie sygnału w kasecie; i Std: błąd standardowy średniego natężenia sygnału. - Przejdź do następnego obrazu.
- Dalej analizuj dane w arkuszu kalkulacyjnym.
UWAGA: Aby znaleźć średnią grubość warstwy, weź dziesięć wartości Len.