Artykuł metodologiczny

Obrazowanie poklatkowe migracji radialnej neuronów korowych w transdukowanych wycinkach mózgu embrionalnego myszy

29 maja 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Wiegreffe, C., et. al., Poklatkowe obrazowanie konfokalne migrujących neuronów w organotypowej kulturze warstwowej embrionalnego mózgu myszy przy użyciu {{}}W macicy elektroporacji. J. Vis. exp.{{TAG_ 44}} (2017)

Ten film przedstawia poklatkową mikroskopię konfokalną w celu obserwacji radialnej migracji neuronów korowych ze strefy podkomorowej do płytki korowej za pomocą promieniowych rusztowań glejowych w transdukowanych wycinkach mózgu myszy embrionalnych.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury dotyczące próbek zwierzęcych zostały sprawdzone i zatwierdzone przez odpowiednią komisję ds. oceny etycznej zwierząt.

1. Obrazowanie poklatkowe

  1. } Konfiguracja mikroskopu
    1. Ustaw komorę klimatyczną umieszczoną na stoliku odwróconego mikroskopu konfokalnego na temperaturę 37 °C i 5% atmosfery dwutlenku węgla. Użyj detektora hybrydowego, aby zmniejszyć intensywność lasera i poprawić żywotność komórek. Do szczegółowej analizy należy użyć suchego obiektywu o bardzo dużej odległości roboczej 40X i aperturze numerycznej 0,6 lub większej.
      Uwaga: Wszystkie elementy mikroskopu muszą być wstępnie podgrzane do 37 °C przez 2 - 3 godziny przed obrazowaniem, aby zapewnić stabilną ostrość podczas procesu obrazowania.
  2. Obrazowanie wycinków
    1. Wybierz wycinek mózgu do obrazowania z 6-dołkowej płytki zawierającej wkładki membranowe za pomocą odwróconego mikroskopu fluorescencyjnego.
      Uwaga: Unikaj przedłużonego czasu ekspozycji na światło ultrafioletowe, ponieważ może to spowodować fotouszkodzenie komórek.
      UWAGA: Wybierz wycinek z jasnymi pojedynczymi neuronami w górnej SVZ (strefa podkomorowa) migrującymi promieniście w kierunku powierzchni wycinka. Drobne procesy fluorescencyjne promienistych komórek glejowych, które obejmują całą CP (płytkę korową) wskazują na nienaruszone promieniste rusztowanie glejowe, które jest wykorzystywane przez promieniście migrujące neurony korowe.
    2. Za pomocą kleszczy przenieś wkładkę membranową z plastrem, który został wybrany do obrazowania poklatkowego, do naczynia ze szklanym dnem o średnicy 50 mm zawierającego 2 ml pożywki do hodowli plastrów. Umieść naczynie w komorze klimatycznej mikroskopu konfokalnego.
    3. Ustaw rozdzielczość na 512 na 512 pikseli i zwiększ prędkość skanowania z 400 Hz do 700 Hz, aby zwiększyć liczbę klatek na sekundę odpowiednio z około 1,4 do około 2,5 klatki na sekundę. Uśredniaj nie więcej niż dwa razy. Zdefiniuj stos z przechodzący przez obszar elektroporowany (zwykle 400-100 μm) z rozmiarem kroku 1,5 μm. Łącznie ustawienia te pozwalają na uzyskanie wystarczającej rozdzielczości i jasności obrazu przy jednoczesnym utrzymaniu niskiego poziomu fotouszkodzeń podczas akwizycji. Rozpocznij serię poklatkową, wykonując z-stack co 30 minut.
      UWAGA: Długotrwała ekspozycja wycinka na światło laserowe wywoła fotouszkodzenia, zmniejszając żywotność komórek. Dostosuj odpowiednio czas ekspozycji na światło lasera.
    4. Analizuj serie poklatkowe za pomocą oprogramowania ImageJ (https://imagej.nih.gov/iij/) lub jego odpowiednika.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
6-well plateCorning351146
Mikroskop hodowli tkanek z odwróconą fluorescencjąLeicaDM IL LED
Konfokalny laserowy mikroskop skaningowyLeicaTCS SP5II
Detektor hybrydowyLeicaHyD
Obiektywny, 40x/0,60 NALeica11506201
System kontroli temperatury mikroskopuUsługi obrazowania życiaCube, Brick & Box
Wkładka do hodowli komórkowejMilliporePICM0RG50
MicrogrinderNarishigeEG-45Użyj kąta 38° do fazowania
MicroinjectorParker Hannifin052-0500-900Picospritzer III
Pęseta z 5 mm platynowymi elektrodami krążkowymiSonidelCUY650P5
Ściągacz do mikropipetInstrument SutteraP-97
Filament BoxInstrument SutterFB255B2,5 mm x 2,5 mm
Szpatułka do mikrołyżkiVWR231-0191185 mm x 5 mm
Naczynie ze szklanym dnem, 50 mmWorld Precision InstrumentsFD5040-100

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Migracja neuron w korowychmikroskopia konfokalnarusztowanie glei radialnejmikroskopia fluorescencyjnaakwizycja stos w Z Z stackelektroporacja in uterostrefa podkomorowablaszka korowa

Powiązane artykuły