Artykuł metodologiczny

Obrazowanie in vitro w czasie rzeczywistym rozgałęzień aksonalnych w neuronach korowych myszy

17 czerwca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Winkle, C. C., et al. Wykorzystanie połączonych metodologii w celu zdefiniowania roli dostarczania błony plazmatycznej podczas rozgałęziania aksonów i morfogenezy neuronów. J. Vis. Exp. (2016)

Ten film przedstawia technikę obrazowania na żywo z wykorzystaniem mikroskopii różnicowego kontrastu interferencyjnego (DIC) do obserwacji rozgałęzień aksonalnych w czasie rzeczywistym w neuronach korowych. Filmy poklatkowe ukazują efekty leczenia netryną-1, cząsteczką sygnałową, która indukuje zlokalizowaną egzocytozę i rearanżacje cytoszkieletu w aksonach. Procesy te inicjują wypukłości błony, które rozwijają się w dojrzałe gałęzie aksonów, zapewniając wgląd w rozwój neuronów.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Różnicowy kontrast interferencyjny (DIC) Mikroskopia poklatkowa rozgałęzień aksonów

Uwaga: Chociaż ten protokół wykorzystuje DIC, inne metody mikroskopii światła przechodzącego mogą być używane do tych samych celów (na przykład: kontrast fazowy).

  1. Po 2 dniach in vitro (DIV) umieść szklane naczynie do obrazowania zawierające nietransfekowane neurony we wstępnie ogrzanej komorze środowiskowej, aby utrzymać wilgotne środowisko z 5% CO2 i 37 °C. Użyj mikroskopu wyposażonego w 60-krotny planapochromat, soczewkę obiektywową DIC o aperturze numerycznej 1,4 (NA) i kondensor o wysokiej NA, aby uzyskać najlepszą jakość i rozdzielczość obrazu.
  2. Dostosuj płaszczyznę ogniskowej, aby znaleźć neurony przez okulary za pomocą oświetlenia światłem przechodzącym.
  3. Korzystając z funkcji akwizycji wielu obszarów w oprogramowaniu do obrazowania, znajdź i zapisz lokalizacje XYZ co najmniej 6 komórek. Ustaw stolik tak, aby interesujące go neurony mieściły się w polu widzenia, aby uzyskać najlepsze wyniki.
    1. Stymuluj 250 ng/ml netrin-1 i naciśnij 'rozpocznij akwizycję wielu obszarów'. Sekwencyjnie rejestruj obrazy w każdej pozycji co 20 sekund przez 24 godziny, zatrzymując akwizycję i ponownie ustawiając ostrość w razie potrzeby.
  4. Przeglądanie obrazów w oprogramowaniu do przetwarzania obrazu za pomocą opcji Apps>Review Multi Dimensional Data>open file name. Zidentyfikuj stabilne gałęzie aksonów (o długości 20 μm), które tworzą się podczas sesji obrazowania. Użyj narzędzia do rysowania linii, aby zmierzyć stabilną gałąź aksonu od podstawy aksonu do końcówki, aby upewnić się, że spełnione są wymagania dotyczące długości 20 μm.
    1. W arkuszu kalkulacyjnym zapisz numer klatki po stymulacji netryny, gdy wystające membrany zaczynają się w obszarach, gdzie później tworzą się gałęzie, a także numer klatki po stymulacji netryny, gdy powstające gałęzie osiągają 20 μm długości.
    2. Pomnóż liczbę ramek między występem a formacją gałęzi przez 20 sekund, aby obliczyć czas formowania na gałąź.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
35mm Naczynia do obrazowania żywych komórek ze szklanym dnemMatek Corporationp356-1.5-14-Cmuszą być pokryte 1mg/mL poli-d-lizyny i wypłukane przed posiewem komórek
Mikroskop odwrócony Olympus IX81-ZDC2Olympus
Lampa ksenonowa Lambda LSFirma Sutter Instruments Environmental
Stage Górny inkubatorTokai Hit
100x 1.49 NA Obiektyw TIRFOlympus
Andor iXon EM-CCDAndor
Odyssey Licor System obrazowania w podczerwieniLI-COROdyssey CL-XUżywany do skanowanie kleksów
Pakiet oprogramowania Image studioLI-COR Służy do skanowania w systemie Odyssey Infrared; Image studio lite służy do analizy plam w trybie offline
Metamorph dla urządzeń OlympusMolecular Devices, LLCwersja 7.7.6.0Oprogramowanie używane do obrazowania i analizy timelapse DIC
Oprogramowanie sterujące CELL TIRFOprogramowanie Olympus używane do sterowania laserami do obrazowania TIRF
Fidżi (zdjęcie J)NIHImageJ Wersja 1.49t
60x Plan Apochromat 1.4 NAOlympus
40x 1.4 NA Plan Apochromatobiektyw Olympus
Neurobasel mediaGIBCO21103-049Roztwór bazowy zarówno do pożywek bezpestkowych, jak i trypsyny
Suplement B27GIBCO17504-044500ml/50mLs Pożywka bez surowicy i pożywka do gaszenia trypsyny
L-Glutamina 35050-0611 ml / 50 ml Pożywka wolna od surowicy
Płodowa surowica bydlęcaCorning/CELLGRO35-010-CV
Zrównoważony roztwór soli Hanka (HBSS)Corning/CELLGRO20-021-CV
Poli-D-LizynaSigmap-7886
obiektyw

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

DIC MicroscopyLive ImagingTime Lapse ImagingNetrin 1 TreatmentExocytosisCytoskeletal RearrangementNeuronal DevelopmentMembrane Protrusions

Powiązane artykuły