Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Transfekcja zwojów korzenia grzbietowego myszy za pośrednictwem elektroporacji w celu wspomagania regeneracji aksonów czuciowych

823 wyświetleń

⸱

7 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Li, Q. et al. Badanie regeneracji aksonów ssaków: elektroporacja in vivo zwoju korzenia grzbietowego dorosłej myszy. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film demonstruje transfekcję neuronów DRG myszy za pośrednictwem elektroporacji w celu zbadania regeneracji aksonów. Przedstawiono w nim etapy dostarczania konstruktów kwasu nukleinowego do neuronów DRG, indukowania uszkodzenia nerwu kulszowego i oceny regeneracji aksonów.

Protokół

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

  1. Wstrzyknięcie do ganglionu korzenia grzbietowego (DRG)
    1. Wstrzyknąć roztwór znieczulający (rozcieńczyć awertynę w sterylnym roztworze soli fizjologicznej o końcowym stężeniu 20 mg/ml, z avertyną 200 mg/kg masy ciała) dootrzewnowo, aby podtrzymać znieczulenie przed wstrzyknięciem DRG.
    2. Załaduj plazmidy kwasu dezoksyrybonukleinowego (DNA) lub oligonukleotydy kwasu rybonukleinowego (RNA) (1 μl na DRG) do szklan....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
ECM 830 System elektroporacji fal prostokątnychBTX Harvard Apparatus45-0052Do elektroporacji in vivo
Elektrody pęsetoweBTX Harvard Apparatus45-0524Do elektroporacji in vivo, płaski
1 mmPicospritzer IIIParker Instrumentation1096Wewnątrzkomórkowe systemy dozowania mikroiniekcji
Kapilary ze szkła borokrzemianowegoWorld Precision Instruments, Inc.
Stereoskopowy mikroskop preparacyjnyLeicaM80
Kleszcze mikrochirurgiczneFST firmy DUMONT, Szwajcaria11255-20Tylko do zmiażdżenia nerwu kulszowego
Glass CapillaryWorld Precision Instruments, Inc.TW100-410 cm, standardowa taśma ścienna
Fisherbrand15-901-30Do mocowania myszy na tablicy korkowej
2, 2, 2-Tribromoetanol (Avertin)Sigma-AldrichT48402Avertin roztwór podstawowy
2-metylo-2-butanolSigma-Aldrich152463Avertin roztwór podstawowy
siRNA Fluorescencyjna uniwersalna kontrola negatywna #1Sigma-AldrichSIC003Niedocelowe siRNA z fluorescencyjną
mikroRNA Naśladująca kontrola transfekcji za pomocą Dy547DharmaconCP-004500-01-05mikroRNA niedocelowego z fluorescencyjną
plazmidąInvitrogen PurelinkK210016Preparat plazmidowy kodujący GFP
Fast Green DyeMillipore-SigmaF7252Dla lepszej wizualizacji konturu DRG podczas wstrzykiwania
KetaminePutney, IncNDC 26637-731-51Indukcja znieczulenia
KsylazynaAnaSedNDC 59399-110-20Indukcja znieczulenia
ParacetamolMcNeil Consumer HealthcareNDC 50580-449-36Ulga w bólu pooperacyjnym
1902328 Zestaw do przygotowania

Tagi

Transfekcja poprzez elektroporacjęzwoje grzbietowe nerwów myszyuszkodzenie nerwunerw kulszowypipeta do mikroiniekcjiimpulsy elektryczneRNA znakowane fluoroforemzamknięcie szwem