Subskrypcja JoVE jest wymagana do oglądania tego materiału. Zaloguj się lub rozpocznij bezpłatny okres próbny.

Artykuł metodologiczny

Obrazowanie dynamiki wapnia w komórkach rzęsatych linii bocznej larw danio pręgowanego

764 wyświetleń

⸱

17 czerwca 2025

W tym artykule

Streszczenie

Źródło: Łukasz, D., et al. Obrazowanie in vivo wapnia komórek rzęsatych linii bocznej u larw danio pręgowanego. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film pokazuje obrazowanie na żywo napływu wapnia do komórek rzęsatych linii bocznej sparaliżowanej transgenicznej larwy danio pręgowanego przy użyciu mikroskopu konfokalnego. Mechaniczna stymulacja wiązek włosów za pomocą impulsów płynu indukuje wnikanie wapnia przez kanały mechanotransdukcji i kanały bramkowane napięciem, co jest wizualizowane w czasie rzeczywistym za pomocą wskaźników fluorescencyjnych. Metoda ta uwypukla wierzchołkową i podstawową dynamikę wapnia w komórkach rzęsatych nerwu jastrowego, wyjaśniając ich rolę w wykrywaniu ruchu wody.

Protokół

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

  1. Przypinanie i unieruchamianie larwy do komory obrazowania
    1. Kąp larwę Tg(myo6b:GCaMP6s-caax) w około 1 ml buforu zarodka (E3) zawierającego 0,04% MS-222 przez 1–2 minuty na silikonowej powierzchni enkapsulantu komory obrazowania, aż larwa stanie się nieruchoma lub przestanie reagować na dotyk.
      1. Pod mikroskopem stereoskopowym umieść larwę na środku komory perfuzyjnej tak, aby leżała płasko na boku na silikonow....

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Wyniki

figure-results-1

Rysunek 1: Komora obrazowania, procedury montażu danio pręgowanego i iniekcji serca oraz igły. (A) Pokazana jest komora obrazowania z larwą (obrysowaną przerywanym prostokątem) przypiętą do środka na szczycie silikonowej obudowy. (B1).......

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
α-BungarotoxinR&D Systems2133Do paraliżowania larw przed obrazowaniem
Komora obrazowaniaSiskiyouPC-RPlatforma do montażu larw do obrazowania
nr 1.5 Szkiełka nakrywkowe kwadratowe, 22*22 mmVWR48366-227Do uszczelnienia komory obrazowania
Wysokopróżniowy smar silikonowyFischer Scientific14-635-5DDo mocowania szkiełka nakrywkowego do komory obrazowania
Silikonowa kapsułka przezroczysta 0,5 g zestawEllsworth AdhesivesDow Corning Sylgard, 184 SIL ELAST KIT 0,5 KGDo wypełnienia komory obrazowania w celu stworzenia powierzchni do przypinania ryb
StereoskopCarl Zeiss MikroskopiaStemi 2000 z oświetleniem światłem przechodzącymDo oświetlania drutu, kleszczyków i nożyczek do robienia szpilek
Kleszczeprecyzyjne Narzędzia do naukiDumont #5 (0,05 x 0,02 mm) Nr kat. 11295-10 Dorobienia szpilek
Cienkie nożyczkiCole-Palmer5,5", EW-10818-00Do cięcia drutu tunsgten do robienia szpilek
Drut wolframowy, 0,035 mmGoodfellowW005131Do szpilek na głowę do unieruchamiania larw
Drut wolframowy, 0,025 mmThermoFischer ScientificAA10405-H4Do sworzni ogonowych do unieruchamiania larw
Kapilary ze szkła borokrzemianowego bez włóknaSutter Instrument CompanyB 150-86-10Szkło do wciągania w igły do strumienia płynów w celu stymulacji komórek rzęsatych
Cienkie kleszczeFine Science ToolsDumont #5 (0,05 x 0,02 mm) Nr kat. 11295-10Do przypinania larw
Żel Wskazówki dotyczące ładowaniaEppendorf5242956003Do wypełniania igieł do wstrzykiwań serca
Mikroskop stereoskopowyCarl Zeiss MikroskopiaStemi 2000 z oświetleniem w świetle przechodzącym Dooświetlania larw podczas przypinania i iniekcji serca
Szklany uchwyt kapilarny/igłyWPIMPH315Do trzymania igieł do strumienia płynów
Mikromanipulator ręcznyNarishigeM-152Do przytrzymywania i pozycjonowania uchwytu igły do wstrzykiwania α-bungarotoxin
Stojak magnetycznyNarishigeGJ-1Do trzymania ręcznego mikromanipulatora do wstrzykiwania α-bungarotoksyny
Wtryskiwacz ciśnieniowyEppendorfFemtojet 4xDo dostarczania α-bungarotoksyny
Mikroskop konfokalnyBrukerSweepfield/OpterraStały, pionowy mikroskop z optyką DIC i laserem 488 nm z odpowiednimi filtrami
Oprogramowanie mikroskopuBrukerPrairieview 5.3Do koordynowania i sterowania mikroskopem, laserami, stolikiem, piezo-z, kamerami i strumieniem płynu
10-krotny obiektyw powietrznyNikonMRH00101Niskie powiększenie do pozycjonowania larw i strumienia płynu
Obiektyw wodny 60xNikonMRF07620Obiektyw z immerysonem wodnym o wysokim NA (1,0) i odpowiedniej odległości roboczej (2,0 mm)
Skaner obiektywowy Piezo-Z ze sterownikiem/sterownikiemPhysik Intruments instruments/Bruker01144210/UM-Z-PZSzybka akwizycja stosu Z z dokładnością 0,025um
Kamera EMCCDQImagingRolera EM-C2 Kamera EMCCDo małym rozmiarze piksela, która może rejestrować do 100 klatek na s
Adapterkomory okrągłejSiskiyouPC-A Dotrzymania i obracania komory obrazowania na stoliku mikroskopu
Zmotoryzowany stolik Z-deckWcześniejszyZDN12MPStolik mikroskopowy, który może trzymać i przesuwać razem próbkę i mikromanipulator z igłą do strumienia płynu
Adapter do wkładki stopnia Z-deckNIH Warsztat maszynowyna zamówienieAby dopasować adapter komory okrągłej do stolika z pokładem Z-deck
Aparaturado strumienia płynuALA scientific instrumentsHSPC-1 Szybkoobrotowy zacisk ciśnieniowy z pompą PV Dokontrolowania i dostarczania bodźca strumienia płynu
Masterflex Rurka silikonowa utwardzana nadtlenkiem (1 stopa)Cole-PalmerMasterflex L/S 13, 96400-13Do podłączenia uchwytu igły do strumienia płynu do pompy ciśnieniowej
Mikromanipulator z napędemSutter Instrument CompanyMP-225Do trzymania i pozycjonowania uchwytu igły do płynu sterownik
mikromanipulatorastrumieniowego Sutter Instrument CompanyMPC-200Do sterowania manipulatorem igłowym ze strumieniem płynu
Końcówki do ładowania żeluEppendorf5242956003Do zasypywania igieł do strumienia płynu
Szklany uchwyt kapilarny/igłyWPIMPH315Do trzymania igieł do strumienia płynów
Manometr PSISper Scientific840081Do pomiaru wyjście zaciskowe
ciśnienia Prism7GraphpadPrism7Oprogramowanie do wykreślania zmian
FIJISchindelin, et., al.34https://fiji.sc/ Oprogramowaniedo przetwarzania obrazów i tworzenia map sygnałów czasoprzestrzennych
Turboreg PluginThévenaz et., al.29http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/turboreg/Wtyczka do rejestracji sekwencji obrazów GCaMP6 w FIJI
StackReg PluginThévenaz et., al.29http://bigwww.epfl.ch/thevenaz/stackreg/Wtyczka do rejestracji sekwencji obrazów GCaMP6 w FIJI
Times Series Analyzer V3 PluginBalaji J 2007, Dept. of Neurobiology, UCLAa href='https://imagej.nih.gov/ij/plugins/time-series.html'>https://imagej.nih.gov/ij/plugins/time-series.htmlWtyczka do tworzenia wielu ROI w celu pomiaru zmian intensywności GCaMP6
naukowy silnikowym intensywności GCaMP6<

Przeglądaj więcej artykułów

Obrazowanie wapniowelarwa danio przebranymikroskopia konfokalnastymulacja strumieniem cieczykanały mechanotransdukcyjnekanały sterowane napięciemwskaźniki fluorescencyjneobrazowanie neuromastów