Method Article

Obrazowanie tkanek głębokich mózgu danio pręgowanego przy użyciu trójfotonowego mikroskopu fluorescencyjnego

June 17th, 2025

In This Article

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Hontani, Y., et al. Mikroskopia fluorescencyjna trójfotonowa tkanek głębokich w nienaruszonym mózgu myszy i danio pręgowanego. J. Vis. Exp. (2022)

Ten film pokazuje konfigurację i wykonanie obrazowania trójfotonowego w znieczulonym mózgu danio pręgowanego. Protokół umożliwia wizualizację głębokich tkanek neuronów znakowanych fluorescencyjnie, ujawniając aktywność neuronalną i struktury w czasie rzeczywistym do zastosowań badawczych w dziedzinie neurobiologii.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

  1. Obrazowanie przyżyciowe w mózgu danio pręgowanego
    UWAGA: Aby prawidłowo zlokalizować mózg ryby pod soczewką obiektywu, na tej samej ścieżce, co światło wzbudzenia (CCD), stosuje się wtórną kamerę ze sprzężeniem ładunkowym do obrazowania szerokokątnego.
    1. Ustaw mikroskop i skalibruj moc.
    2. Umieść obiektyw o małym powiększeniu (zwykle 4x) na mikroskopie.
    3. Umieścić szalkę Petriego zawierającą rybę i probówki pod mikroskopem.
    4. Użyj źródła światła z diodą elektroluminescencyjną (LED), aby oświetlić szalkę Petriego.
    5. Otwórz tryb aparatu w oprogramowaniu do akwizycji obrazów (Rysunek 1).
    6. Kliknij opcję Na żywo.
    7. Wybierz kanał A po prawej stronie ekranu.
    8. Dostosuj ustawienia histogramu, aby obraz był wyraźnie widoczny.
      UWAGA: W razie potrzeby należy je zaktualizować.
    9. Ustaw ustawienie silnika w sterowniku silnika na Base.
    10. Opuść obiektyw, aż ryba będzie widoczna.
      UWAGA: Upewnij się, że soczewka obiektywu nie ma żadnego fizycznego kontaktu z głowicą.
    11. Umieść środek głowy ryby w środku pola widzenia.
    12. Przesuń cel w górę i odsuń go od głowy ryby.
    13. Wymień soczewkę obiektywu o małym powiększeniu na soczewkę obiektywową o wysokim otworze numerycznym (NA) dla 3PM (mikroskopia trójfotonowa).
      UWAGA: Soczewka o małym powiększeniu i soczewka obiektywowa o wysokim NA nie muszą być parafokalne, ale muszą być wystarczająco blisko, aby ryba znajdowała się w polu widzenia soczewki obiektywu o wysokiej NA.
    14. Powoli opuść soczewkę obiektywu, upewniając się, że obiektyw nie ma żadnego fizycznego kontaktu z głowicą. W oprogramowaniu kamery CCD przestań przesuwać obiektyw, gdy widoczny jest czubek głowy. Ustaw położenie z na 0 μm.
      UWAGA: Upewnij się, że pod soczewką obiektywu nie ma pęcherzyków powietrza podczas korzystania z obiektywu zanurzonego w wodzie.
    15. Wyłącz źródło światła LED i zamknij ciemną kurtynę wokół systemu.
    16. Ustaw oprogramowanie do akwizycji obrazu w trybie Multiphoton GG dla obrazowania 3P i ustaw moc pod soczewką obiektywu na mniej niż 1 mW (z częstotliwością powtarzania impulsów ~1 MHz).
    17. Zmień przycisk ustawień silnika z podstawy na obiektyw na sterowniku silnika.
    18. Zgaś światło w pokoju.
    19. Włącz lampy fotopowielacza (PMT) i otwórz migawkę źródła wzbudzenia 3PM. Upewnij się, że kontur kości pojawia się w kanale sygnału fluorescencji z powodu autofluorescencji oraz w kanale sygnałowym trzeciej harmonicznej (THG) z powodu THG kości (ryc. 1C).
    20. Wykonuj obrazowanie na różnych głębokościach, zwiększając poziomy mocy podczas głębszego obrazowania.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
figure-results-1

Rysunek 1: Reprezentatywne zrzuty ekranu dla obrazowania przyżyciowego u ryb (sekcja protokołu 1). (A) Widok w trybie kamery w oprogramowaniu do akwizycji obrazu z założonym obiektywem 4x. Kluczowe funkcje oprogramowania są ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
5% Powidon-jodAmazonNDC 67818-155-32Aceptyczne czyszczenie obszarów chirurgicznych
70% etanoluThermo Fisher ScientificCAS 64-17-5Aceptyczne czyszczenie obszarów operacyjnych
AgarozaSigmaA4718-256Przygotowanie komory danio pręgowanego
Bergamo IIThorlabsMikroskop do obrazowania
BupivacaineCornell Veterinary Care
GaAsP Ampliified PMTThorlabsPMT2100detektor PMT
Grzałka (800 W)Finnex Grzałka akwariowa do wody danio pręgowanej)
KimwipesKimtech Laboratoryjna tkanka do przygotowania danio pręgowanego
Strzykawka Nanofil (10 mikrometrów) z igłą 36 GWPINANOFIL + NF36BVStrzykawka i igła do wstrzykiwania bromku pankuronium
Pompa perystaltycznaElemental ScienceESI MP2Pompa wodna do konfiguracji danio pręgowanego
Rurka polietylenowa (średnica wewnętrzna 0,58 mm., średnica zewnętrzna 0,965 mm.)Elemental ScienceRurka pompy MP2Rurka wchodząca do pyska danio pręgowanego
SR400Stanford Research SystemsSR400Licznik fotonów
Standardowy czujnik mocy fotodiodyThorlabsS122CDetektor mocy
Cienki pasek wosku do pakowaniaCorning Rubber Co., Inc. Rurki przytrzymujące na miejscu w komorze danio pręgowanego
ThorImageThorlabs Oprogramowanie do akwizycji obrazów
Trikaina (sól metanosulfonianu etylu)MP103106Danio pręgowany anestezjologiczne i eutanazyjne
Rurki Tygon (ID 1/16 cala, OD 1/8 cala)Tygon Rurka do przepływu wody do przygotowania danio pręgowanego
VaporGuardVetEquip931401Do recyklingu kleju tkankowego izofluranu
Vetbond3M1469SBDo przyklejenia szklanego okienka na czaszce myszy oraz do przyklejenia tkanki laboratoryjnej podczas przygotowywania ryby.
XLPLN25XWMP2Olympus Dedykowany obiektyw wzbudzenia wielofotonowego
wielofotonowego

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Three Photon MicroscopyZebrafish Brain ImagingDeep Tissue ImagingFluorescent Neuron VisualizationObjective Lens AdjustmentLED Light SourceImage Acquisition SoftwarePMT Gain AdjustmentMotor Controller SettingsReal Time Neuronal Activity

Related Articles