Artykuł metodologiczny

Ocena neuroprotekcyjnego działania badanego związku w mysim modelu niedrożności tętnicy środkowej mózgu

7 sierpnia 2025

W tym artykule

Streszczenie

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Źródło: Lee, S. E., et al. Ocena neuroprotekcyjnego działania ekstraktu z Glycyrrhizae radix et rhizoma przy użyciu mysiego modelu przejściowej niedrożności tętnicy środkowej mózgu. J. Vis. Exp. (2018)

Ten film przedstawia procedurę oceny neuroprotekcyjnego działania badanego związku w mysim modelu niedrożności tętnicy środkowej mózgu. Związek dostaje się do mózgu, zapobiega śmierci neuronów i zmniejsza objętość zawału, potwierdzając jego działanie neuroprotekcyjne w porównaniu z nieleczoną myszą.

Protokół

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Wszystkie procedury z udziałem modeli zwierzęcych zostały zweryfikowane przez lokalną instytucjonalną komisję ds. opieki nad zwierzętami oraz weterynaryjną komisję rewizyjną JoVE.

1. Mysi model niedrożności tętnicy środkowej mózgu (MCAO)

  1. Użyj samców myszy C57BL/6 w wieku 6 tygodni i o wadze 22-25 g. Zapewnij wszystkim zwierzętom swobodny dostęp do standardowej karmy i wody oraz trzymaj je w środowisku o kontrolowanej temperaturze (22 ±1°C) i 12-godzinnym cyklu światła/ciemności.
    1. Podziel myszy na grupy po sześć myszy każda, które powinny składać się z pozorowanych grup normalnych, kontrolnych i leczonych Glycyrrhizae Radix et Rhizoma (GRex).
    2. Wykonaj operację MCAO w grupie kontrolnej i grupie leczonej GRex za pomocą stereomikroskopu.
  2. Wywołaj znieczulenie wziewne u myszy za pomocą 2% izofluranu w 70% podtlenku azotu (N₂O) i 30% tlenu (O₂). Znieczulenie jest uważane za wystarczające, gdy mysz przestaje reagować na bodziec mechaniczny przyłożony do jej ogona. Utrzymuj temperaturę ciała myszy na poziomie 36,5 ± 0,5 °C za pomocą koca utrzymującego temperaturę ciała podłączonego do termometru.
  3. Usuń wszystkie włosy na klatce piersiowej i szyi myszy poprzez golenie, a następnie użycie kremu do depilacji. Zdezynfekuj miejsce operowane skóry peelingiem betadynowym na przemian dwukrotnie z alkoholem, a następnie wykonaj nacięcie o długości około 2 cm za pomocą ostrza chirurgicznego na środku szyi. Ostrożnie odizoluj lewą tętnicę szyjną wspólną (LCCA), tętnicę szyjną zewnętrzną i odgałęzienie tętnicy szyjnej wewnętrznej od otaczających tkanek łącznych.
  4. Podwiązać tętnicę szyjną zewnętrzną i tętnicę szyjną wspólną za pomocą szwu chirurgicznego (szew jedwabny 4-0, węzeł półzaczepiający), aby tymczasowo zablokować przepływ krwi do tętnicy szyjnej wewnętrznej podczas operacji.
  5. Wprowadzić nylonowy szew pokryty silikonem (żyłka 8-0 o długości 11 mm) przez tętnicę szyjną wewnętrzną do początku lewego MCA. Dostosuj grubość pokrytej silikonem części filamentu w zakresie 0,10-0,12 mm.
  6. Zmierz spadek względnego przepływu krwi w mózgu (rCBF) w MCA za pomocą laserowego przepływomierza dopplerowskiego. MCAO zostanie potwierdzone, gdy rCBF zostanie utrzymany na poziomie < 20% wartości stanu spoczynku przez cały okres niedokrwienia.
  7. Przymocuj wprowadzony filament do naczynia krwionośnego na 2 godziny, podczas gdy tętnica mózgowa jest niedrożna, a następnie ostrożnie wycofaj włókno, aby przywrócić przepływ krwi przez 22 godziny reperfuzji. Zszyj skórę, szyjąc w pięciu miejscach (szew jedwabny 3-0, dwa węzły półzaczepowe) i pozwól każdej myszy obudzić się ze znieczulenia.

Dostęp ograniczony. Zaloguj się lub rozpocznij wersję próbną, aby wyświetlić tę treść.

Materiały

Lista materiałów użytych w tym artykule
NazwaFirmaNumer katalogowyKomentarze
Glycyrrhizae Radix et RhizomaGwangmyoung Pharmaceuticals Co., Korea
Mikroskop stereoskopowyLeicaM50
Mikroskop stereoNikonSMZ745
Laserowy instrumentdopplerowskimoorVMS-LDF
Wspornik stołowy anestezjologiczny z systemem przepływomierzy N₂O i O₂Harvard Appratus34-1352
System monitorowania homeotermicznegoHarvard Appratus55-7020
Dieta myszyDoo Yeol BiotechStandardowa karma dla gryzoni
IzofluranJOONGWAEA02104781
IsofluraneTROIKAAISOTROY 100
Szew jedwabny (4-0 jedwab)AILEESK47510
Jedwabny szew (3-0 biały jedwab)Baekjae57
Nylonowy szew (8-0 monofilament)AILEENB825
KleszczNarzędzia naukowe11241-30
KleszczNarzędzia naukowe11254-20
KleszczNarzędzia naukowe11260-20
Cienki kleszczNarzędzia naukowe11274-20
Nożyczki chirurgiczneFine Science Tools14001-12
Bardzo cienkie nożyczki BonnFine Science Tools14084-08
Nożyczki sprężynowe Moria Pascheff-WolffFine Science Tools15371-92
Kleszcz do rozszerzania naczyńFine Science Tools18153-11

Przedruki i uprawnienia

Poproś o pozwolenie na ponowne wykorzystanie tekstu lub ilustracji tego artykułu JoVE

Poproś o pozwolenie

Tagi

Ocena efektu neuroprotekcyjnegopodawanie zwi zku testowegopomiar przep ywu krwi w m zgutechnika okluzji filamentempodawanie przez zg bnik do o dkaanaliza obj to ci zawa uhamowanie apoptozy neuron wmodel uszkodzenia reperfuzyjnegoprocedura MCAO u myszy

Powiązane artykuły