Przeszczepianie komórek linii zarodkowej zostało opracowane przez dr. Ralpha Brinstera i współpracowników z University of Pennsylvania w 1994 roku1,2. Te przełomowe badania wykazały, że mikroiniekcja komórek linii zarodkowej od płodnych myszy donora do kanalików nasiennych bezpłodnych myszy biorcy prowadzi do spermatogenezy pochodzącej od donora i produkcji plemników przez zwierzę biorcę2. Wykorzystanie samców donora niosących bakteryjny gen β-galaktozydazy pozwoliło na identyfikację spermatogenezy pochodzącej od donora oraz przekazanie haplotypu donora potomstwu zwierząt biorców1. Co zaskakujące, po przeszczepieniu do światła kanalików nasiennych, przeszczepione komórki linii zarodkowej były w stanie przemieścić się z przedziału światła do błony podstawnej, w której znajdują się spermatogonia3. Powszechnie przyjmuje się, że tylko SSC są w stanie skolonizować niszę i przywrócić spermatogenezę w jądrze biorcy. Zatem przeszczepianie komórek linii zarodkowej stanowi funkcjonalne podejście do badania niszy komórek macierzystych w jądrze oraz charakterystyki domniemanych komórek macierzystych spermatogonialnych. Do dziś przeszczepianie komórek linii zarodkowej jest wykorzystywane do wyjaśniania podstawowej biologii komórek macierzystych, wytwarzania zwierząt transgenicznych poprzez manipulacje genetyczne komórek linii zarodkowej przed przeszczepieniem4,5, badania interakcji między komórkami Sertolego a komórkami linii zarodkowej6,7, homingu i kolonizacji SSC3,8, a także samoodnowy i różnicowania SSC9,10.
Przeszczepy komórek linii zarodkowej są możliwe również u dużych gatunków11. W ich przypadku głównymi zastosowaniami są zachowanie płodności, rozpowszechnianie elitycznej genetyki w populacjach zwierząt oraz generowanie zwierząt transgenicznych, ponieważ badanie spermatogenezy i biologii SSC za pomocą tej techniki jest logistycznie trudniejsze i bardziej kosztowne niż u gryzoni. Przeszczepienie komórek linii zarodkowej dużych gatunków do kanalików nasiennych myszy prowadzi do kolonizacji komórek dawcy i ekspansji spermatogonialnej, ale nie do ich pełnego różnicowania, co prawdopodobnie wynika z niekompatybilności somatycznego komponentu komórkowego biorcy z komórkami linii zarodkowej gatunków odległych filogenetycznie12. Alternatywnym podejściem jest przeszczepienie komórek linii zarodkowej dużych gatunków wraz z otaczającym je komponentem somatycznym. W 2002 roku po raz pierwszy zgłosiliśmy, że małe fragmenty tkanki jądra niedojrzałych samców przeszczepione pod skórę grzbietową myszy z niedoborem odporności są w stanie przetrwać i przejść pełny rozwój z produkcją plemników zdolnych do zapłodnienia13. Od tego czasu wykazano, że ksenoprzeszczepy tkanki jądra odnoszą sukces u wielu gatunków i stały się cenną alternatywą do badania rozwoju jąder oraz spermatogenezy dużych zwierząt u myszy14.